米糠是稻米加工过程中产生的主要副产物,由果皮、种皮、珠心层、糊粉层及少量胚芽等组成,约占稻谷质量的5%~8%[1]。米糠中不仅含有蛋白质、脂肪和膳食纤维等营养成分,还富含维生素、多酚、植物甾醇、谷维素、多糖等活性成分,并具有抗肿瘤、抗菌消炎、降胆固醇等生理活性,因此被称为“天然营养宝库”[2-3]。然而,约90%米糠被丢弃或用作饲料和肥料[4]。近年来,由于食品加工业副产品的可用性和接受度不断提高,米糠被视为二次食品加工业中功能性成分的重要来源[5]。同时,国家卫生健康委员会积极配合各有关部门出台政策,发展米糠产业,挖掘米糠营养价值,促进粮食减损增效和国民营养健康。
亚临界水提取技术是近年来新兴的一种提取技术,亚临界水在适当压力及 100~374 ℃的高温条件下,仍能保持流体状态。通过改变温度和压力,实现水从强极性到中等极性、非极性的转变,从而实现水溶性成分到脂溶性成分的连续性提取[6]。目前,亚临界水提取技术已广泛应用于制药、生物技术、环境保护和化学工业。亚临界水作为一种绿色、环保、价廉的新型提取技术,在高效分离和提取米糠营养组分方面具有较大潜力。
目前,国内关于亚临界水技术在食品方面的研究较少,利用亚临界水技术处理米糠进行综合评价的研究鲜见。Ruthes等[7]采用亚临界水技术在不同温度(100、120、140、160 ℃)和不同pH值(5、7、9)的条件下处理麦麸,发现与常规的碱提取法相比,该方法可有效提高总固体得率和生物活性物质提取率。Fabian等[8]采用亚临界水技术在不同温度下(125、150、175、200 ℃)处理脱脂米糠35 min,提取脱脂米糠中的酚酸,发现温度对酚酸得率影响显著。李诚[9]考察亚临界水温度(120~180 ℃)、pH值(4~10)、提取时间(10~180 min)、循环次数(1~3 次)对麦麸中蛋白质、酚酸、木质素等物质提取率的影响,阐明了阿拉伯木聚糖在亚临界水中的迁移和结构转变规律。本文在已有研究基础上,采用亚临界水萃取技术,选取不同提取温度、提取时间、体系pH值处理米糠样品[7-9],并分析米糠中的营养成分在水相和固相的迁移规律,以期为米糠资源的综合利用提供新途径。
新鲜米糠:苏惠米业有限公司, 将新鲜米糠过30目筛网,放入-18 ℃冰箱保存。二水合甲酸钠、甲酸、盐酸、硫酸、硼酸、氢氧化钠、氢氧化钾、碳酸钠、石油醚、乙醇、碳酸钙、3,4,5-三甲氧基肉桂酸、乙酸乙酯(均为分析纯)、正己烷、甲醇、乙腈(均为色谱纯):国药集团化学试剂有限公司;总淀粉试剂盒:爱尔兰Megazyme公司;N,O-双(三甲基硅烷基)三氟乙酰胺[N,O-bis(trimethylsilyl)trifluoroacetamide,BSTFA]、三甲基氯硅烷(trimethylchlorosilane,TMCS)、5α-胆甾烷醇、阿魏酸、对香豆酸、角鲨烯、谷维素、植物甾醇标准品:美国Sigma-Aldrich公司。
亚临界水提取反应釜(MC500):北京世纪森朗实验仪器有限公司;高效液相色谱仪(1260):安捷伦仪器(中国)有限公司;气相色谱串联质谱仪(1100):赛默飞世尔科技(中国)有限公司;自动定氮仪器(KDN-130F):上海纤检仪器有限公司;旋转蒸发仪(P-RV10):上海技舟化工科技有限公司;紫外可见分光光度计(UV-1100):上海美谱达仪器有限公司;低速台式大容量离心机(TDL-5A):无锡瑞江仪器有限公司。
1.3.1 亚临界水处理
将新鲜全脂米糠过30目筛网,取30 g米糠加入反应釜中,再加入300 mL已调节pH值的甲酸钠缓冲液,按照试验条件进行反应。将反应后的料液转移至500 mL烧杯,并多次用甲酸钠缓冲液冲洗,4 000 r/min离心10 min,分别保存上清液和残渣。将残渣用200 mL去离子水洗涤3次,4 000 r/min离心10 min,将所有上清液合并,保留残渣备用。将所得上清液旋蒸浓缩至200 mL,并装入自封袋;将残渣装入自封袋中,冻干后放入干燥器中待用。
在已有单因素试验基础上[7-9],采用Box-Behnken响应面设计试验,选择有显著影响的3个因素:提取温度(A)、提取时间(B)和体系pH值(C),进行三因素三水平的响应面分析。响应面试验因素与水平见表1。
表1 响应面试验因素与水平
Table 1 Factors and levels of response surface test
因素水平A提取温度/℃B提取时间/minC体系pH值-11205501503071180609
1.3.2 基本成分含量的测定
水分含量测定参照GB 5009.3—2016《食品安全国家标准 食品中水分的测定》;脂肪含量测定参照GB 5009.6—2016《食品安全国家标准 食品中脂肪的测定》;蛋白质含量测定参照GB 5009.5—2016《食品安全国家标准 食品中蛋白质的测定》;总淀粉含量按照总淀粉试剂盒说明书进行测定。
1.3.3 木质素、纤维素及半纤维素含量的测定
单糖组成及固相木质素含量测定参考文献[10]中的方法。准确称取0.3 g 样品于蓝盖瓶中,加入3.00 mL 72%硫酸,搅拌混匀后,置于30 ℃恒温水浴60 min,加入84.0 mL去离子水稀释硫酸,混匀后灭菌。酸解液冷却后,使用砂芯坩埚过滤,收集滤液和残渣。通过称重法测定残渣质量,计算木质素含量。加入碳酸钙中和滤液,待滤液中的固体完全沉淀,取滤液过0.22 µm滤膜,通过高效液相色谱(high performance liquid chromatography,HPLC)仪分析单糖组成,计算纤维素和半纤维素含量。
1.3.4 酚酸的测定
酚酸的测定参照陈中伟[11]的方法并稍作修改。样品粉碎后过150目筛,称取0.02 g样品于25 mL棕色三角瓶中,加入0.5 mL 80%乙醇辅以超声波分散均匀。再加入10 mL 2.0 mol/L NaOH溶液振荡均匀。向棕色三角瓶顶部空间通入氮气,封口膜密封,35 ℃恒温振荡水解2 h。水解完成后,再加入50 µL 、以 50% 甲醇水溶液配制的 1 mg/mL 3,4,5-三甲氧基肉桂酸内标物。将提取液pH值调至2.0,再用3倍体积乙酸乙酯提取两次,合并提取液,35 ℃旋蒸至2~3 mL,转移至5 mL试管中,室温下以氮气吹干。加入0.8 mL 50% 甲醇溶液复溶,过0.22 µm滤膜,进行HPLC分析。
1.3.5 米糠毛油活性成分的测定
米糠毛油制备:称取5 g左右的固相物质,加入100 mL 正己烷,室温下振荡20 min,4 000 r/min离心10 min,过滤后保留上清液,重复以上操作3遍,将所有上清液合并,旋蒸至2 mL,用3 mL 左右正己烷少量多次洗涤旋蒸瓶,氮气吹干,直至无正己烷残留。将所得样品放入-18 ℃冰箱保存待用。
谷维素的测定参照陈燕飞等[12]的方法并稍作改动。称取油样0.1 g置于10 mL棕色容量瓶中,加入异丙醇,超声溶解、定容、摇匀,通过0.22 µm有机滤膜,进样量10 µL。
角鲨烯、植物甾醇的测定参照朱小勇等[13]的方法。准确称取油样0.2~0.3 g于15 mL离心管,加入0.5 mL 的0.1 mg/mL的5α-胆甾烷醇,加入3 mL 2 mol/L KOH-乙醇溶液,85 ℃水浴1 h,冷却后加入2 mL水和5 mL正己烷,静置后提取上层清液于15 mL离心管,下层用5 mL正己烷再提取两次,合并有机液,加入2 mL水,振荡后提取上清液于15 mL离心管,氮气吹干;加入BSTFA+TMCS(体积比99:1)硅烷化试剂200 µL,置于75 ℃水浴30 min。取出冷却后,过0.22 µm有机膜,进样量1 µL。
1.3.6 水溶性固形物得率、提取率和保留率的计算
水溶性固形物得率(X,%)、提取率(T,%)和保留率(B,%)的计算公式如下。
式中:S为上清液质量,g;L为原料质量,g;Q为上清液中某物质含量,g/100 g;Y为原料中该物质含量,g/100 g;C为残渣中某物质含量,g/100 g;Z为残渣质量,g。
试验均重复 3 次,结果表示为平均值±标准差,使用软件 SPSS Statistics 26 进行方差分析,p<0.05 表示差异显著,p<0.01 表示差异极显著。利用 Design Expert 13.0.1 软件进行响应面试验设计及试验数据处理,并对数据进行分析。
米糠基本成分见表2。
表2 米糠基本成分
Table 2 Basic components of rice bran
水分蛋白质脂肪总淀粉木质素半纤维素纤维素灰分阿魏酸对香豆酸谷维素植物甾醇角鲨烯含量/含量/含量/含量/含量/含量/含量/含量/含量/含量/含量/含量/含量/(g/100 g)(g/100 g)(g/100 g)(g/100 g)(g/100 g)(g/100 g)(g/100 g)(g/100 g)(mg/100 g)(mg/100 g)(mg/100 g)(mg/100 g)(mg/100 g)15.83±13.28±18.00±17.36±20.61±8.73±10.43±9.52±2.60±1.20±428.00±252.61±77.60±0.190.020.050.310.080.160.200.150.000.000.210.370.06
由表2可知,米糠原料中的主要成分为木质素、脂肪、总淀粉、蛋白质、纤维素、灰分和半纤维素,其中木质素含量为20.61 g/100 g,脂肪含量为18.00 g/100 g, 总淀粉含量为17.36 g/100 g,蛋白质含量为13.28 g/100 g,纤维素含量为10.43 g/100 g,灰分含量为9.52 g/100 g,半纤维素含量为8.73 g/100 g。赵鑫等[14]对24个不同品种间稻谷米糠营养成分含量的差异性进行比较分析发现,不同种源米糠中各个成分的含量有较大差异,本研究中原料主要成分含量与该研究结果一致。米糠中的结合酚以阿魏酸和对香豆酸为主[15],阿魏酸含量为2.60 mg/100 g,对香豆酸含量为1.20 mg/100 g。米糠毛油中含有丰富植物甾醇、角鲨烯、谷维素等植物化学物质[16],谷维素含量为428.00 mg/100 g,角鲨烯含量为77.60 mg/100 g,植物甾醇含量为252.61 mg/100 g。
不同处理条件下的水溶性固形物得率见表3,方差分析见表4。
表3 不同处理条件下的水溶性固形物得率
Table 3 Yield of water-soluble solids under different treatment conditions
A提取温B提取时C体系水溶性固形试验号度/℃间/minpH值物得率/%115030753.87212030949.3731205749.7741505551.73518030964.60615030755.67712060749.97815030755.82915030756.931015060960.131118060751.60121505961.701312030547.831415060558.20151805766.331615054.263071718030563.47
表4 水溶性固形物得率响应面模型显著性检验和方差分析
Table 4 Response surface model significance test and variance analysis for yield of water-soluble solids
注:**表示影响极显著(p<0.01);*表示影响显著(p<0.05)。
方差来源F值p值模型7.750.018 2*A提取温度40.660.001 4**B提取时间0.980.366 8 C体系pH值0.120.742 7 AB8.640.032 5*BC2.320.188 3 A21.590.263 4 B20.030.870 1失拟项4.210.197 7
从表4可以看出,在亚临界水处理试验中,一次项提取温度(A)对水溶性固形物得率影响极显著,提取时间(B)和体系pH值(C)无显著影响;二次项A2和B2无显著影响;交互项AB影响显著,说明提取温度与提取时间对水溶性固形物得率存在显著交互作用。提取温度和提取时间对水溶性固形物得率影响的响应面见图1。
图1 提取温度和提取时间对水溶性固形物得率影响的响应面
Fig.1 Response surface for the effects of extraction temperature and extraction time on the yield of water-soluble solids
由图1可知,提取温度对水溶性固形物得率影响极显著,水溶性固形物得率随提取温度升高而升高,即米糠中的部分物质向水相迁移,淀粉、纤维素、半纤维素、蛋白质等物质溶出,导致水溶性固形物得率增大;当提取温度过高时,水溶性固形物得率随着提取时间的延长而降低,部分物质开始降解,水溶性固形物得率降低。在提取温度180 ℃、提取时间5 min、体系pH7时,水溶性固形物得率达到最大值(66.33%)。
不同处理条件下的米糠主要成分提取率和保留率见表5,相应方差分析见表6和表7。
表5 不同处理条件下的米糠主要成分提取率和保留率
Table 5 Extraction rate and retention rate of main components from rice bran under different treatment conditions
A提取B提取C体系蛋白质脂肪淀粉半纤维素纤维素木质素试验号温度/℃时间/minpH值提取率/%提取率/%提取率/%提取率/%提取率/%保留率/%115030745.6417.5099.2315.1544.7137.83212030925.7415.2285.8410.2446.3429.8431205723.789.6977.1916.4561.3827.2741505532.9010.8589.7720.8052.8433.42518030970.1414.5995.6776.3129.2568.29615030747.5814.6187.7722.1448.3739.26712060729.3417.2086.6917.5244.3033.14815030746.2814.5090.2020.6045.0239.85915030747.1011.3788.8423.8045.2440.991015060951.6712.0982.4629.7045.7844.161118060766.6010.0588.3548.1957.0175.02121505937.0519.3783.9215.7059.0834.421312030536.879.3980.4215.9349.4132.261415060553.3115.6484.8029.2144.2643.62151805768.2911.8293.1659.3832.9157.791615030747.3515.6089.5023.5845.6838.361718030570.868.09100.0076.9239.6768.99
表6 蛋白质、脂肪和淀粉提取率响应面模型显著性分析
Table 6 Significance analysis of response surface model for extraction rates of proteins, fats and starch
注:**表示影响极显著(p<0.01);*表示影响显著(p<0.05)。
蛋白质提取率脂肪提取率%淀粉提取率方差来源F值p值F值p值F值p值模型250.120.000 4**5.160.018 6**6.860.006 3**A提取温度2 352.21<0.000 1**1.830.213 116.310.002 4**B提取时间2.770.194 40.380.582 60.0250.880 4 C体系pH值1.180.359 17.870.023 0*AB9.300.055 55.350.049 4*3.440.093 4 AC20.110.020 7*BC6.230.088 09.250.016 0*A244.870.006 8**5.550.046 3*B241.810.007 5**6.550.028 4*C21.680.285 4失拟项1.980.294 20.250.919 10.250.939 2
表7 半纤维素、纤维素提取率和木质素保留率响应面模型显著性分析
Table 7 Significance analysis of response surface model for extraction rates of hemicellulose and cellulose as well as lignin retention rate
注:**表示影响极显著(p<0.01);*表示影响显著(p<0.05)。
半纤维素提取率纤维素提取率木质素保留率方差来源F值p值F值p值F值p值模型22.330.013 3*5.020.019 7*221.10<0.000 1**A提取温度38.870.008 3**4.070.068 61 602.71<0.000 1**B提取时间2.550.208 40.740.408 7135.01<0.000 1**C体系pH值7.170.075 20.190.678 9 AB89.680.002 5**9.400.010 7*18.320.003 7**AC2.800.193 10.430.532 4 BC3.930.141 68.941×10-30.927 3 A213.060.036 4*245.18<0.000 1 B234.960.009 7**5.040.059 7 C21.830.269 20.860.383 4失拟项1.710.321 214.190.067 51.250.402 8
2.3.1 亚临界水处理对蛋白质提取率的影响
提取温度和体系pH值对蛋白质提取率影响的响应面见图2。
图2 提取温度和体系pH值对蛋白质提取率影响的响应面
Fig.2 Response surface for the effect of extraction temperature and extraction pH on protein extraction rate
由表6可知,提取温度对蛋白质提取率影响极显著,提取温度和体系pH值对蛋白质提取率影响显著。由图2可知,蛋白质提取率随提取温度升高而增大;可能是因为随着提取温度的升高,物料内分子动能增加,形成了更多蛋白质分子与水分子间的氢键,有利于蛋白质的溶出,蛋白质提取率提高[17]。在提取温度180 ℃、提取时间30 min、体系pH5时,蛋白质提取率达到最大值70.86%。
2.3.2 亚临界水处理对脂肪提取率的影响
提取温度-提取时间、体系pH值-提取时间对脂肪提取率影响的响应面见图3。
图3 提取温度-提取时间、体系pH值-提取时间对脂肪提取率影响的响应面
Fig.3 Response surfaces of the effects of extraction temperatureextraction time and pH-extraction time on fat extraction rate
由表6可知,提取温度-提取时间、提取时间-体系pH值对脂肪提取率影响显著。由图3可知,经过亚临界水提取,大部分脂肪保留在残渣中,提取物中的脂肪含量低;随体系pH值的升高,脂肪提取率提高,这可能是由于脂肪在碱性条件下发生皂化反应,促使部分脂肪溶于水相;随着提取温度升高,脂肪提取率先升高后降低。提取温度升高,束缚在细胞结构中的脂肪在高温作用下释放出来,且由于乳化作用进入水相,但是当提取温度过高时,脂肪的乳化体系被破坏,被高温分解,从而造成脂肪提取率的下降[18];在提取温度150 ℃、提取时间5 min、体系pH9时,脂肪提取率达到最大值(19.37%)。
2.3.3 亚临界水处理对淀粉提取率的影响
提取温度-提取时间对淀粉提取率影响的响应面见图4。
图4 提取温度-提取时间对淀粉提取率影响的响应面
Fig.4 Response surface for the effects of extraction temperature and extraction time on starch extraction rate
由表6可知,提取温度对淀粉提取率影响极显著。由图4可知,淀粉几乎全部从固相迁移到了水相;当提取时间一定时,淀粉提取率随着提取温度升高而显著增大,高温打破了结晶胶束区的氢键,使淀粉分子展开,同时淀粉发生水解作用,这使得淀粉更易于溶解到水相中;当提取温度一定时,淀粉提取率随着提取时间的延长先增大后减小,淀粉开始糊化,恒定一段时间后,淀粉颗粒破裂,黏度下降,冷却时,淀粉分子重新缔合形成沉淀[19],导致淀粉提取率先升高后降低;在提取温度180 ℃、提取时间30 min、体系pH5时,淀粉提取率达到最大值(100%)。
2.3.4 亚临界水处理对半纤维素和纤维素提取率的影响
提取温度-提取时间对半纤维素和纤维素提取率影响的响应面见图5。

图5 提取温度-提取时间对半纤维素和纤维素提取率影响的响应面
Fig.5 Response surfaces for the effects of extraction temperatureextraction time on the extraction rates of hemicellulose and cellulose
由表7可知,提取温度对半纤维素提取率影响极显著。由图5可知,半纤维素提取率随着提取温度升高而升高,可能是由于高温下半纤维素发生了部分水解,导致半纤维素提取率增大[20];当提取温度较高时,提取时间延长,半纤维素提取率先增加后降低,可能是由于半纤维素部分降解;在提取温度180 ℃、提取时间30 min、体系pH5时,半纤维素提取率达到最大值(76.92%)。由图5可知,纤维素提取率随着提取温度升高而降低;温度较低、时间较短时,纤维素水解成葡萄糖,溶于水相;温度过高,时间较长时,葡萄糖开始降解,产生糠醛等物质,纤维素提取率降低[21];在提取温度120 ℃、提取时间5 min、体系pH7时,纤维素提取率达到最大值(61.38%)。
2.3.5 亚临界水处理对木质素保留率的影响
提取温度-提取时间对固相里木质素保留率影响的响应面见图6。
图6 提取温度-提取时间对固相里木质素保留率影响的响应面
Fig.6 Response surface for the effects of extraction temperatureextraction time on lignin retention rate in solid phase
由表7可知,提取温度和提取时间对木质素保留率影响极显著。由图6可知,木质素保留在固相;木质素保留率随着提取温度升高和提取时间延长而升高;因固相里的蛋白质、淀粉、半纤维素等物质溶出,导致固相里木质素保留率明显升高。在提取温度180 ℃、提取时间60 min、体系pH7时,木质素保留率达到最大值(75.02%)。
不同处理条件下的米糠活性成分提取率和保留率见表8,方差分析见表9。
表8 不同处理条件下的米糠活性成分提取率和保留率
Table 8 Extraction rate and retention rate of active components from rice bran under different treatment conditions
B提取阿魏酸对香豆谷维素角鲨烯植物甾试验号时间/提取酸提取保留保留醇保留温度/℃pH值1118060769.4115.0321.9130.4136.77A提取C体系min率/%率/%率/%率/%率/%115030714.4415.1725.8444.4474.3921203097.639.3940.4346.7871.203120575.819.3340.8746.6065.024150557.8214.6241.4851.3158.17518030979.3931.4524.7542.1554.33615030716.2118.1336.5248.7872.11712060718.5927.6042.2160.5781.04815030719.5219.8735.2048.6572.15915030720.7121.6138.5650.4469.811015060933.4623.5534.5044.9763.46121505916.4819.5940.0245.0867.871312030510.3012.5341.5352.0765.571415060530.8919.8632.8038.9747.60151805773.9828.4527.0033.0041.121615030717.3816.8537.2049.3470.251718030588.1041.7620.9924.3431.05
表9 阿魏酸、对香豆酸提取率响应面模型显著性分析
Table 9 Significance analysis of response surface model for extraction rates of ferulic acid and p-coumaric acid
注:**表示影响极显著(p<0.01)。
方差来源**BC0.100.764 5阿魏酸提取率对香豆酸提取率F值p值F值p值模型20.310.002 0**19.110.002 3**A提取温度138.87<0.000 1**1.710.247 7 B提取时间4.560.085 83.690.112 9 C体系pH值0.000 70.979 62.990.144 1 AB1.370.294 840.110.001 4 AC0.140.720 92.050.211 4 A234.740.002 0**6.080.056 9 B20.0030.958 3 C21.290.307 43.730.111 4失拟项9.51 0.096 70.380.805 2
2.4.1 亚临界水处理对酚酸提取率的影响
提取温度-提取时间对阿魏酸和对香豆酸提取率影响的响应面见图7。

图7 提取温度-提取时间对阿魏酸和对香豆酸提取率影响的响应面
Fig.7 Response surfaces for the effects of extraction temperatureextraction time on the extraction rates of ferulic acid and p-coumaric acid
由表9可知,提取温度对阿魏酸提取率影响极显著。由图7可知,阿魏酸提取率随提取温度的升高而显著升高,阿魏酸主要以酯键形式结合在半纤维素中[22],大量的半纤维素溶出,阿魏酸也随之溶出,阿魏酸提取率增大。在提取温度180 ℃、提取时间5 min、体系pH9时,阿魏酸提取率达到最大值(88.10%)。提取时间一定时,对香豆酸提取率随提取温度的升高而升高;反之,提取温度一定时,对香豆酸提取率随提取时间的延长而升高[23];当提取温度和提取时间相互作用时,二者同时升高或降低,作用强度过高或过低,对香豆酸提取率较低。在提取温度180 ℃、提取时间5 min、体系pH9时,对香豆酸提取率达到最大值41.76%。
2.4.2 亚临界水处理对米糠毛油中活性成分保留率的影响谷维素、角鲨烯、植物甾醇保留率响应面模型显著性分析见表10。
表10 谷维素、角鲨烯、植物甾醇保留率响应面模型显著性分析
Table 10 Significance analysis of response surface model for extraction rates of oryzanol, squalene and phytosterols
注:**表示影响极显著(p<0.01);*表示影响显著(p<0.05)。
来源F值p值F值p值F值p值模型12.470.000 7**10.090.001 7**14.770.000 4**B提取时间2.080.177 1 A 26.080.056 95.460.039 4*方差谷维素保留率角鲨烯保留率植物甾醇保留率A提取温度35.27<0.000 1**25.000.000 4**32.180.000 1**C体系pH值0.060.812 00.650.436 66.680.025 4*AC3.470.243 8 C23.730.111 4失拟项0.280.948 60.340.805 212.690.075 1
各因素对谷维素保留率、角鲨烯保留率、植物甾醇保留率影响的响应面图见图8~图10。
图8 提取温度-提取时间、体系pH值-提取温度对谷维素保留率影响的响应面
Fig.8 Response surfaces for the effects of extraction temperature-extraction time and pH-extraction temperature on oryzanol retention rate
由表10可知,提取温度对谷维素、角鲨烯和植物甾醇保留率影响极显著。由图8可知,提取时间一定时,谷维素保留率随提取温度的升高而降低;提取时间和体系pH值对谷维素提取率无影响。由图9和图10可知,提取时间一定时,角鲨烯、植物甾醇保留率随提取温度升高而降低;提取温度一定时,随着体系pH值的增大,角鲨烯、植物甾醇保留率越高;由以上结果可知,温度过高会降解米糠毛油里的活性成分[24],导致保留率降低;在提取温度120 ℃、提取时间60 min、体系pH7时,谷维素、角鲨烯、植物甾醇保留率达到最大值,分别为42.21%、60.57%、81.04%。
图9 提取温度-提取时间、体系pH值-提取温度角鲨烯保留率影响的响应面
Fig.9 Response surfaces for effects of extraction temperature-extraction time and pH-extraction temperature on squalene retention rate
图10 提取温度-提取时间、体系pH值-提取温度对植物甾醇保留率影响的响应面
Fig.10 Response surfaces for effects of extraction temperature-extraction time and pH-extraction temperature on phytosterol retention rate
本研究选择有显著影响的3个处理因素提取温度、提取时间和体系pH值进行三因素三水平的响应面分析。经过亚临界水处理,离心分离得到水相和固相两组分,对其成分进行测定。结果表明:提取温度对水溶性固形物得率的影响极显著,随提取温度升高,水溶性固形物得率升高,提取时间对水溶性固形物得率的影响较小,二者存在相互作用影响水溶性固形物得率;在提取温度180 ℃、提取时间5 min、体系pH7时,水溶性固形物得率达到最大值(66.33%)。提取温度对米糠蛋白质、淀粉、半纤维素、阿魏酸提取率及木质素保留率影响显著,随提取温度的升高,蛋白质、淀粉、半纤维素、阿魏酸提取率及木质素保留率均升高;提取时间对米糠营养成分提取率无显著影响;体系pH值对脂肪提取率影响显著,对其它营养成分的提取率无显著影响;在提取温度180 ℃、提取时间30 min、体系pH5时,蛋白质、淀粉、半纤维素提取率达到最大值,分别为70.86%、100%、76.92%;在提取温度180 ℃、提取时间5 min、体系pH9时,阿魏酸、对香豆酸提取率达到最大值,分别为88.10%、41.76%。提取温度和体系pH值对固相中米糠毛油里的活性物质影响显著,随提取温度升高,谷维素、角鲨烯、植物甾醇保留率显著降低;在提取温度120 ℃、提取时间60 min、体系pH7时,谷维素、角鲨烯、植物甾醇保留率达到最大值,分别为42.21%、60.57%、81.04%。
[1] RIVERO MEZA S L, CAÑIZARES L, DANNENBERG B, et al.Sustainable rice bran protein: Composition, extraction, quality properties and applications[J]. Trends in Food Science & Technology,2024, 145: 104355.
[2] ANDRIANI R, SUBROTO T, ISHMAYANA S, et al. Enhancement methods of antioxidant capacity in rice bran: A review[J]. Foods,2022, 11(19): 2994.
[3] 高琨, 姜平, 谭斌, 等. 稻米及其加工副产物米糠中γ-谷维素研究现状[J]. 粮油食品科技, 2021, 29(5): 91-98.GAO Kun, JIANG Ping, TAN Bin, et al. Research progress on γ-oryzanol in rice and its processed by-product rice bran[J]. Science and Technology of Cereals, Oils and Foods, 2021, 29(5): 91-98.
[4] DAS P P, GUL M Z, WEBER A M, et al. Rice bran extraction and stabilization methods for nutrient and phytochemical biofortification, nutraceutical development, and dietary supplementation[J].Nutrition Reviews, 2025, 83(4): 692-712.
[5] TAN B L, NORHAIZAN M E. Rice By-products: Phytochemicals and food products application[M]. Cham: Springer International Publishing, 2020.
[6] SARKER T R, PATTNAIK F, NANDA S, et al. Hydrothermal pretreatment technologies for lignocellulosic biomass: A review of steam explosion and subcritical water hydrolysis[J]. Chemosphere,2021, 284: 131372.
[7] RUTHES A C, MARTÍNEZ-ABAD A, TAN H T, et al. Sequential fractionation of feruloylated hemicelluloses and oligosaccharides from wheat bran using subcritical water and xylanolytic enzymes[J].Green Chemistry, 2017, 19(8): 1919-1931.
[8] FABIAN C, TRAN-THI N Y, KASIM N S, et al. Release of phenolic acids from defatted rice bran by subcritical water treatment[J].Journal of the Science of Food and Agriculture, 2010, 90(15): 2576-2581.
[9] 李诚. 麦麸阿魏酰阿拉伯木聚糖的亚临界水制备及其氧化凝胶化性能的研究[D]. 无锡: 江南大学, 2021.LI Cheng. Subcritical water preparation of feruloylated arabinoxylan from wheat bran and its oxidative gelation properties[D].Wuxi: Jiangnan University, 2021.
[10] Sluiter A, Hames B, Ruiz R, et al. Determination of structural carbohydrates and lignin in biomass[EB/OL]. [2025-01-01]. https://docs.nrel.gov/docs/gen/fy13/42618.pdf.
[11] 陈中伟. 麦麸糊粉层细胞簇的机械剥离及电场富集研究[D]. 无锡: 江南大学, 2015.CHEN Zhongwei. Mechanical dissociation and electric separation of aleurone cell-cluster from wheat bran[D]. Wuxi: Jiangnan University, 2015.
[12] 陈燕飞, 金俊, 郑苏卫, 等. 高效液相色谱法测定米糠油中谷维素含量[J]. 中国粮油学报, 2014, 29(7): 112-115.CHEN Yanfei, JIN Jun, ZHENG Suwei, et al. Determination of oryzanol content in rice bran oil by high performance liquid chromatography[J]. Journal of the Chinese Cereals and Oils Association,2014, 29(7): 112-115.
[13] 朱小勇, 潘立卫, 卢汝梅, 等. 超临界CO2萃取紫玉盘茎挥发油化学成分的分析[J]. 中国实验方剂学杂志, 2011, 17(21): 121-123.ZHU Xiaoyong, PAN Liwei, LU Rumei, et al. Analysis of chemical constituents of essential oils from stem of uvria microcarpa by SFE-CO2[J]. Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae, 2011, 17(21): 121-123.
[14] 赵鑫, 张子腾, 朱丽丹, 等. 不同品种米糠营养成分含量的相关性分析及米糠与稻米成分的聚类分析[J]. 食品工业科技, 2012,33(1): 52-55.ZHAO Xin, ZHANG Ziteng, ZHU Lidan, et al. Correlativity and cluster analysis of nutrient content of rice and rice bran from different areas[J]. Science and Technology of Food Industry, 2012, 33(1):52-55.
[15] 肖一婷. 米糠多酚的提取、鉴定及体外模拟消化研究[D]. 天津:天津科技大学, 2023.XIAO Yiting. Extraction, identification and in vitro simulated digestion of rice bran polyphenols[D]. Tianjin: Tianjin University of Science & Technology, 2023.
[16] KHOEI M, CHEKIN F. The ultrasound-assisted aqueous extraction of rice bran oil[J]. Food Chemistry, 2016, 194: 503-507.
[17] 孙尧华, 唐月登, 肖雯渲, 等. 响应面法优化紫米糠蛋白质的提取工艺[J]. 粮食与油脂, 2023, 36(2): 9-13.SUN Yaohua, TANG Yuedeng, XIAO Wenxuan, et al. Optimization of protein extraction process from purple rice bran by response surface methodology[J]. Cereals & Oils, 2023, 36(2): 9-13.
[18] MOREIRA B P, DRASZEWSKI C P, ROSA N C, et al. Integrated rice bran processing by supercritical CO2 extraction and subcritical water hydrolysis to obtain oil, fermentable sugars, and platform chemicals[J]. The Journal of Supercritical Fluids, 2023, 192:105786.
[19] RONG L Y, SHEN M Y, WEN H L, et al. Effects of xanthan, guar and Mesona chinensis Benth gums on the pasting, rheological, texture properties and microstructure of pea starch gels[J]. Food Hydrocolloids, 2022, 125: 107391.
[20] COCERO M J, CABEZA Á, ABAD N, et al. Understanding biomass fractionation in subcritical & supercritical water[J]. The Journal of Supercritical Fluids, 2018, 133: 550-565.
[21] 宝贵荣, 陈萨日娜, 领小, 等. Box-Behnken响应面法优化荞麦秸秆中纤维素提取工艺[J]. 化学研究与应用, 2023, 35(3): 532-538.BAO Guirong, CHEN Sarina, LING Xiao, et al. Optimization of extraction process for cellulose of buckwheat straw by Box-Behnken response surface methodology[J]. Chemical Research and Application, 2023, 35(3): 532-538.
[22] KLEPACKA J, FORNAL Ł. Ferulic acid and its position among the phenolic compounds of wheat[J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2006, 46(8): 639-647.
[23] LI C, WANG L, CHEN Z X, et al. Facile and green preparation of diverse Arabinoxylan hydrogels from wheat bran by combining subcritical water and enzymatic crosslinking[J]. Carbohydrate Polymers, 2020, 241: 116317.
[24] 赵晨. 加热处理对米糠油中谷维素的损失规律研究[D]. 郑州:河南工业大学, 2022.ZHAO Chen. Study on the loss rule of γ-oryzanol in rice bran oil under heat treatment[D]. Zhengzhou: Henan University of Technology, 2022.
Evaluation of Effectiveness of Subcritical Water Extraction for Rice Bran Components