大果青扦（Picea neoveitchii）为松科云杉属植物[1]，是国家二级珍稀濒危重点保护野生植物，为我国特有树种，裸子植物，是研究松科系统发育及裸子植物系统发育和起源的关键类群之一[2]。其种鳞宽大，比较特殊，对研究植物区系、云杉属分类和保护物种有重大意义，是集用材、药用、观赏和生态于一体的优良植物[3]。
植物多糖广泛存在于根、茎、叶、花、果实和种子中[4]。植物多糖具有提高免疫力、调节肠道功能、保护肝脏、抗氧化、抗肿瘤、降血糖等多种生物学功能[5]，且具有来源广、毒副作用低等特点，逐渐成为食品、医药领域的研究热点。植物多糖的提取原理是通过破坏细胞壁释放内容物得到多糖，细胞壁周围多含有脂质，一般在提取前需要将原料干燥粉碎并脱脂处理，然后利用多糖相似相溶的特点来进行提取[6]。在酸碱条件下，糖苷键易发生断裂，提取方法不当可能会使多糖因糖苷键断裂而发生部分水解，降低多糖提取率[7]。因此，提取工艺的有效性是获得多糖高提取率的关键[8]。多糖的提取是研究多糖理化性质、结构以及生物活性的前提，研究表明不同的提取方法各有优缺点，因此，在提取植物多糖时需要根据研究目的来选择合适的方法[9]。本试验以大果青扦为研究对象，采用超声辅助技术提取植物多糖，并优化提取工艺，进而探究其抗氧化活性，以期为促进植物多糖的高值化利用提供理论依据，同时为大果青扦多糖的开发利用提供参考。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
大果青扦:河南省南阳市内乡县宝天曼国家级自然保护区。葡萄糖、正丁醇:天津市恒兴化学试剂制造有限公司；无水乙醇、浓硫酸:洛阳市化学试剂厂；苯酚:天津市大茂化学试剂厂；石油醚:上海麦克林生化科技有限公司；氯仿、丙酮、硫酸亚铁、抗坏血酸:天津市凯通化学试剂有限公司；2，2'-联氮-双-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸[2，2'-azinobis-（3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonate），ABTS]、1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（1，1-diphenyl-2-picryl-hydrazyl，DPPH）:北京索莱宝科技有限公司；磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、水杨酸:天津博迪化工股份有限公司；过硫酸钾:天津市风船化学试剂科技有限公司；30% 过氧化氢:天津市致远化学试剂有限公司。以上试剂均为分析纯。
1.2 仪器与设备
超声波清洗机（CJ-040SD）:深圳市超洁科技实业有限公司；离心机（Pico21）:郑州金友宁仪器有限公司；恒温水浴锅（HH-6）:上海力辰邦西仪器科技有限公司；冷冻干燥机（SCIENTZ-12N）:宁波新芝生物科技股份有限公司；恒温振荡器（DLHR-D2802）:北京东联哈尔仪器制造有限公司；电热鼓风干燥箱（101-1SA）:金坛市盛蓝仪器制造有限公司；粉碎机（RS-FS1411）:合肥荣事达电子电器集团有限公司。
1.3 试验方法
1.3.1 材料预处理
将大果青扦按部位进行处理，分为叶、果实、茎3 种材料。洗净后置于60 ℃的电热鼓风干燥箱中烘干，粉碎机粉碎后过60 目筛网，即得叶、果实、茎粉末样品。分别将其与石油醚以1∶10（g/mL）的料液比进行混合，振荡提取24 h 进行脱脂处理，过滤后风干，于密封袋中4 ℃保存备用。
1.3.2 多糖提取率的测定
1.3.2.1 葡萄糖标准曲线绘制
精密称取葡萄糖10 mg 于100 mL 容量瓶中，加水溶解并定容，摇匀得0.1 mg/mL 葡萄糖标准品溶液。分别精密移取0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL 葡萄糖标准品溶液于试管中，并加水定容至1 mL，摇匀配制成不同浓度的葡萄糖对照品溶液并编号。每管分别加入1 mL 5% 苯酚和5 mL 浓硫酸，充分振荡混匀，80 ℃水浴10 min 后，冷水浴5 min 终止反应，以蒸馏水为空白对照，每管取200 μL 加入酶标板，在490 nm 处测OD值。测3 次取平均值，以葡萄糖浓度（X）为横坐标，OD值（Y）为纵坐标绘制葡萄糖标准曲线，得出标准曲线方程[10]Y=9.321 4X+0.004 8，R²=0.998 8。葡萄糖标准曲线如图1 所示。
图1 葡萄糖标准曲线
Fig.1 Standard curve of glucose
1.3.2.2 大果青扦多糖提取率的测定
将提取到的粗多糖溶液稀释到一定浓度，采用苯酚-硫酸法测定其吸光度，将OD 值带入葡萄糖标准曲线，得到粗多糖质量浓度。大果青扦多糖提取率（E，%）的计算公式如下[11]。
式中:A 为稀释倍数；W 为大果青扦粉末的质量，g；C 为粗多糖质量浓度，mg/mL；V 为粗多糖溶液总体积，mL。
1.3.3 大果青扦粗多糖超声辅助提取单因素试验
参考文献[12]，设定初始料液比1∶30 （g/mL）、超声时间60 min、超声温度80 ℃、超声功率240 W。分别取大果青扦叶、果实、茎粉末与蒸馏水按1∶30 （g/mL）混匀，在80 ℃下进行超声辅助提取，超声时间为60 min。提取后，将固液混合物以4 000 r/min 离心10 min，取上清液用8 层纱布过滤，加入4 倍体积95%乙醇并不断搅拌，4 ℃醇沉24 h。4 000 r/min 离心15 min，收集沉淀，用无水乙醇、丙酮洗涤，4 000 r/min离心15 min，收集沉淀，蒸馏水复溶后得粗多糖溶液。
1.3.3.1 料液比对大果青扦叶、果实、茎多糖提取率的影响
分别称取0.5 g 大果青扦叶、果实、茎粉末，在超声时间为60 min、超声温度为80 ℃条件下，研究料液比为1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30 （g/mL）对多糖提取率的影响，以确定最佳料液比。
1.3.3.2 超声温度对大果青扦叶、果实、茎多糖提取率的影响
分别称取0.5 g 大果青扦叶、果实、茎粉末，在料液比为1∶30 （g/mL）、超声时间为60 min 条件下，研究超声温度为50、60、70、80、90 ℃ 对多糖提取率的影响，以确定最佳超声温度。
1.3.3.3 超声时间对大果青扦叶、果实、茎多糖提取率的影响
分别称取0.5 g 大果青扦叶、果实、茎粉末，在料液比为1∶30 （g/mL）、超声温度为80 ℃条件下，研究超声时间为30、40、50、60、70 min 对多糖提取率的影响，以确定最佳超声时间。
1.3.4 大果青扦粗多糖超声辅助提取正交试验
参考文献[13]，在单因素试验结果的基础上，以料液比（A）、超声温度（B）、超声时间（C）为考察因素，多糖提取率为指标，每个因素选3 个水平，设计L9（34）正交试验，探究各因素对大果青扦叶、果实、茎多糖提取率的影响，每组重复试验3 次，以得到大果青扦叶、果实、茎多糖超声辅助提取的最佳工艺参数。叶、果实、茎多糖提取正交试验因素与水平见表1、表2。
表1 叶多糖提取正交试验因素与水平
Table 1 Factors and levels for orthogonal experiment of polysaccharides extracted from leaves
水平因素1 2 3 A 料液比/（g/mL）1∶20 1∶25 1∶30 B 超声温度/℃60 70 80 C 超声时间/min 40 50 60
表2 果实、茎多糖提取正交试验因素与水平
Table 2 Factors and levels for orthogonal experiment of polysaccharides extracted from fruits and stems
因素水平1 2 3 A 料液比/（g/mL）1∶20 1∶25 1∶30 B 超声温度/℃60 70 80 C 超声时间/min 50 60 70
1.3.5 粗多糖溶液分离纯化
经过超声辅助提取的大果青扦粗多糖样品含多种杂质，如蛋白质、色素等，采用Sevage 法进行脱蛋白处理，活性炭法进行脱色处理，采用透析进行除杂[14]。
1.3.5.1 Sevage 法脱蛋白
参考文献[15]，分别取大果青扦叶、果实、茎的粗多糖溶液40 mL，与Sevage 试剂按体积比4∶1 进行混合，恒温振荡2 h，静置20 min，4 000 r/min 离心15 min，中间白色沉淀为蛋白层，取上层多糖溶液，重复上述操作，直至无明显蛋白层析出为止，将脱蛋白后的多糖溶液于4 ℃冰箱保藏备用。
1.3.5.2 活性炭法脱色素
参考文献[16]，活性炭经蒸馏水清洗过滤，120 ℃干燥后备用。取脱蛋白后的多糖溶液，加入2% 体积比的活性炭，50 ℃振荡脱色1 h，经9 000 r/min 离心15 min 后取上清液，得脱色后的多糖溶液。
1.3.5.3 透析
参考文献[17]，将透析袋（3 500 Da）煮沸10 min 后用蒸馏水清洗，将脱色后的多糖溶液装入透析袋，放入烧杯，加蒸馏水至低于透析袋上端，透析72 h，在此期间每隔12 h 换1 次蒸馏水。透析结束后经冷冻干燥得到大果青扦叶、果实、茎多糖。
1.3.6 大果青扦叶、果实、茎多糖体外抗氧化活性测定
以大果青扦叶、果实、茎多糖清除自由基的能力为评价指标，进行体外抗氧化活性测定[18]。阳性对照组:将抗坏血酸（vitamin C，VC）配制成质量浓度分别为0.005、0.010、0.020、0.030、0.040、0.050 mg/mL 的6 个梯度作为对照。试验组:大果青扦叶、果实、茎多糖配制成浓度分别为0.005、0.010、0.020、0.030、0.040、0.050 mg/mL 的6 个梯度样品溶液。
1.3.6.1 大果青扦叶、果实、茎多糖对DPPH 自由基的清除能力测定
分别取2 mL 不同浓度样品溶液与等体积DPPH-乙醇溶液充分混匀，室温避光反应30 min，在517 nm处测定OD 值[19]。空白组以蒸馏水代替不同浓度样品溶液。DPPH 自由基清除率（R1，%）计算公式如下。
式中:A0 为蒸馏水和DPPH-乙醇溶液在517 nm 处的OD 值；A1 为不同浓度样品和DPPH-乙醇溶液在517 nm 处的OD 值；A2 为不同浓度样品和95%乙醇在517 nm 处的OD 值。
1.3.6.2 大果青扦叶、果实、茎多糖对ABTS+自由基的清除能力测定
分别取不同浓度样品溶液1 mL 和ABTS 溶液3 mL 混匀，恒温条件下避光反应15 min，在波长734 nm 条件下测定OD 值[20]。空白组以蒸馏水代替不同浓度样品溶液。ABTS+自由基清除率（R2，%）计算公式如下。
式中:A0 为蒸馏水和ABTS 溶液在734 nm 处的OD 值；A1 为不同浓度样品和ABTS 溶液在734 nm 处的OD 值；A2 为不同浓度样品和蒸馏水在734 nm 处的OD 值。
1.3.6.3 大果青扦叶、果实、茎多糖对羟自由基的清除能力测定
将2 mL 不同浓度样品与2 mL 硫酸亚铁溶液、2 mL 水杨酸-乙醇溶液、2 mL 过氧化氢溶液混匀。在37 ℃恒温水浴锅中反应60 min，冷却后在510 nm 处测定OD 值[21]。空白组以蒸馏水代替不同浓度样品溶液。羟自由基清除率（R3，%）计算公式如下。
式中:A0 为蒸馏水和2 mL 硫酸亚铁、2 mL 水杨酸-乙醇、2 mL 过氧化氢在510 nm 处的OD 值；A1 为不同浓度样品和2 mL 硫酸亚铁、2 mL 水杨酸-乙醇、2 mL 过氧化氢在510 nm 处的OD 值；A2 为不同浓度样品和2 mL 硫酸亚铁、2 mL 无水乙醇、2 mL 过氧化氢在510 nm 处的OD 值。
1.4 数据处理
采用SPSS 27.0 软件对试验数据进行统计分析，试验数据为3 次重复的平均值。
2 结果与分析
2.1 大果青扦叶、果实、茎多糖提取单因素试验结果
叶、果实、茎多糖提取单因素试验结果见图2。
图2 料液比、超声温度、超声时间对多糖提取率的影响
Fig.2 Effect of solid-liquid ratio，ultrasonic temperature，and ultrasound time on polysaccharide extraction rate
A.料液比对多糖提取率的影响；B.超声温度对多糖提取率的影响；C.超声时间对多糖提取率的影响。
由图2A 可知，料液比在1∶25（g/mL）之后，多糖溶解度达到饱和，加大溶剂多糖浸出量不会增加。因此大果青扦叶、果实、茎多糖选取料液比1∶20、1∶25、1∶30（g/mL）3 个水平作为正交试验优化范围。
由图2B 可知，在50～80 ℃范围内，随着超声温度的不断升高，多糖提取率也随之增加，超声温度对大果青扦多糖提取有明显促进作用。随着超声温度增加至90 ℃，多糖提取率呈降低趋势，说明高温会破坏多糖结构，从而降低提取率。因此大果青扦叶、果实、茎多糖选取超声温度60、70、80 ℃ 3 个水平作为正交试验优化范围。
由图2C 可知，在30～70 min 范围内，超声波产生的机械作用使大果青扦叶、果实、茎多糖提取率随超声时间的延长呈现先升高后降低的趋势。提取率达到峰值后延长超声时间，多糖提取率下降，说明超声时间过长会导致目标多糖的降解，从而降低多糖提取率。因此大果青扦叶多糖选取超声时间40、50、60 min 3 个水平作为正交试验优化范围；果实多糖和茎多糖选取超声时间50、60、70 min 3 个水平作为正交试验优化范围。
2.2 正交试验优化大果青扦叶、果实、茎多糖提取工艺
2.2.1 大果青扦叶多糖提取正交试验结果
叶多糖提取正交试验结果见表3。
表3 叶多糖提取正交试验结果
Table 3 Orthogonal experiment results of polysaccharides extracted from leaves
试验号A 料液比B 超声温度C 超声时间1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 2 3 1 3 1 2多糖提取率/%1.98 1.76 2.38 2.45 3.03 2.64 4.27 3.74 3.26均值k1均值k2均值k3极差R 2.040 2.707 3.757 1.717 2.900 2.843 2.760 0.140 2.787 2.490 3.227 0.737
由表3 可知，大果青扦叶多糖提取的最佳工艺组合为A3B1C3，即料液比为1∶30（g/mL），超声温度为60 ℃，超声时间为60 min。
叶多糖提取方差分析结果见表4。
表4 叶多糖提取方差分析
Table 4 Analysis of variance for polysaccharides extracted from leaves
注:* 表示影响显著，P＜0.05。
因素A 料液比B 超声温度C 超声时间误差偏差平方和4.494 0.030 0.824 0.030自由度显著性2 2 2 2 F 比154.996 1.034 28.414 F 临界值19.000 19.000 19.000**
由表4 可知，影响效果排序为料液比＞超声时间＞超声温度。料液比和超声时间对大果青扦叶多糖提取的影响显著，在提取时应严格控制料液比和超声时间。
2.2.2 大果青扦果实多糖提取正交试验结果
果实多糖提取正交试验结果见表5。
表5 果实多糖提取正交试验结果
Table 5 Orthogonal experiment results of polysaccharides extracted from fruits
试验号A 料液比B 超声温度C 超声时间1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 2 3 1 3 1 2多糖提取率/%1.87 1.84 2.24 3.44 4.03 3.27 3.56 3.69 3.29均值k1均值k2均值k3极差R 1.983 3.580 3.513 1.597 2.957 3.187 2.933 0.254 2.943 2.857 3.277 0.420
由表5 可知，大果青扦果实多糖提取的最佳工艺组合为A2B2C3，即料液比为1∶25 （g/mL），超声温度为70 ℃，超声时间为70 min。
果实多糖提取方差分析结果见表6。
表6 果实多糖提取方差分析
Table 6 Analysis of variance for polysaccharides extracted from fruits
注:* 表示影响显著，P＜0.05。
因素A 料液比B 超声温度C 超声时间误差偏差平方和4.895 0.118 0.295 0.120自由度2 2 2 2 F 比41.483 1.000 2.500 F 临界值19.000 19.000 19.000显著性*
由表6 可知，影响效果排序为料液比＞超声时间＞超声温度。料液比对大果青扦果实多糖提取的影响显著，在提取时应严格控制料液比。
2.2.3 大果青扦茎多糖提取正交试验结果
茎多糖提取正交试验结果见表7。
表7 茎多糖提取正交试验结果
Table 7 Orthogonal experiment results of polysaccharides extracted from stems
试验号A 料液比B 超声温度C 超声时间1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 2 3 1 3 1 2多糖提取率/%1.75 1.89 2.29 3.59 3.77 3.18 3.93 3.62 3.27均值k1均值k2均值k3极差R 1.977 3.513 3.607 1.630 3.090 3.093 2.913 0.180 2.850 2.917 3.330 0.480
由表7 可知，大果青扦茎多糖提取的最佳工艺组合为A3B2C3，即料液比为1∶30 （g/mL），超声温度为70 ℃，超声时间为70 min。
茎多糖提取方差分析结果见表8。
表8 茎多糖提取方差分析
Table 8 Analysis of variance for polysaccharides extracted from stems
注:* 表示影响显著，P＜0.05。
因素A 料液比B 超声温度C 超声时间误差偏差平方和5.027 0.064 0.406 0.090自由度2 2 2 2 F 比56.483 0.719 4.562 F 临界值19.000 19.000 19.000显著性*
由表8 可知，影响效果排序为料液比＞超声时间＞超声温度。料液比对大果青扦茎多糖提取的影响显著，提取时应严格控制料液比。
2.3 最佳提取工艺验证
基于正交试验分析得到大果青扦叶、果实、茎多糖提取的最佳理论工艺，依照最优方案提取多糖，大果青扦叶、果实、茎多糖的最佳提取工艺验证结果见图3。
图3 最佳提取工艺多糖提取率
Fig.3 Optimal extraction process for polysaccharide extraction rate
由图3 可知，大果青扦叶多糖平均提取率为4.24%；大果青扦果实多糖平均提取率为3.99%；大果青扦茎多糖平均提取率为3.95%。叶多糖和果实多糖提取率接近正交试验结果，茎多糖最优方案提取率高于正交试验所得结果，说明该工艺参数对大果青扦叶、果实、茎多糖提取的可信度高，能有效预测大果青扦多糖提取率。
2.4 大果青扦叶、果实、茎多糖的抗氧化活性
2.4.1 大果青扦叶、果实、茎多糖对DPPH 自由基的清除能力
DPPH 自由基是一种稳定、以氮为中心的自由基，在波长517 nm 处有强烈的吸收，随着多糖浓度的升高，清除自由基的能力不断增强，吸光度逐渐变小。DPPH-乙醇溶液为紫色，加入大果青扦多糖溶液反应后，其颜色随多糖浓度升高而逐渐变浅。大果青扦叶、果实、茎多糖对DPPH 自由基的清除能力见图4。
图4 不同浓度叶、果实、茎多糖对DPPH 自由基的清除能力
Fig.4 Scavenging ability of polysaccharides from leaves，fruits，and stems at different concentrations on DPPH radicals
由图4 可知，在0.005～0.050 mg/mL 浓度范围内，多糖各浓度对DPPH 自由基有不同程度的清除能力，随着多糖浓度的升高，大果青扦叶多糖、果实多糖、茎多糖和VC 各浓度对DPPH 自由基的清除率也不断递增。多糖浓度在0.050 mg/mL 时，各样品对DPPH 自由基的清除能力最强。VC 对DPPH 自由基的清除能力随着浓度的增加而不断提高，高于3 种多糖样品，差异明显。果实多糖在浓度为0.005 mg/mL 和0.010 mg/mL时，对DPPH 自由基清除率的差异不明显。3 种多糖在0.050 mg/mL 时对DPPH 自由基的清除率均超过50%。叶多糖半数抑制浓度（median inhibition concentration，IC50）值为0.035 mg/mL，果实多糖IC50 值为0.048 mg/mL，茎多糖IC50 值为0.044 mg/mL。从IC50 值看，3 种多糖样品对DPPH 自由基的抗氧化效果为叶多糖＞茎多糖＞果实多糖。
2.4.2 大果青扦叶、果实、茎多糖对ABTS+自由基的清除能力
ABTS 溶液呈蓝绿色，加入多糖溶液后，随着多糖浓度的增加，溶液颜色逐渐变浅，在734 nm 处有最大吸收波长。叶、果实、茎多糖对ABTS+自由基的清除能力见图5。
图5 不同浓度叶、果实、茎多糖对ABTS+自由基的清除能力
Fig.5 Scavenging ability of polysaccharides from leaves，fruits，and stems at different concentrations on ABTS+ radicals
由图5 可知，在0.005～0.050 mg/mL 浓度范围内，多糖各浓度对ABTS+自由基有不同程度的清除能力，随着多糖浓度的升高，ABTS+自由基清除率也不断递增，说明大果青扦多糖的浓度与ABTS+自由基清除能力呈明显的正相关关系。多糖浓度在0.050 mg/mL时，各样品对ABTS+自由基的清除能力最强。叶、果实、茎多糖在浓度为0.005 mg/mL 和0.010 mg/mL 时，对ABTS+自由基清除能力差异不明显；果实多糖在浓度为0.010 mg/mL 和0.020 mg/mL 时，对ABTS+自由基清除能力差异不明显；叶、果实、茎多糖在0.030～0.050 mg/mL 范围内，随着浓度的递增，其对ABTS+自由基的清除率也显著增加。3 种多糖浓度在0.050 mg/mL 时，对ABTS+自由基的清除率均超过50%。叶多糖IC50 值为0.056 mg/mL，果实多糖IC50 值为0.067 mg/mL，茎多糖IC50 值为0.059 mg/mL。从IC50 值看，3 种多糖样品对ABTS+自由基的抗氧化效果为叶多糖＞茎多糖＞果实多糖。
2.4.3 大果青扦叶、果实、茎多糖对羟自由基的清除能力
叶、果实、茎多糖对羟自由基的清除能力见图6。
图6 不同浓度叶、果实、茎多糖对羟自由基的清除能力
Fig.6 Scavenging ability of polysaccharides from leaves，fruits，and stems at different concentrations on hydroxyl radicals
由图6 可知，在0.005～0.050 mg/mL 浓度范围内，各多糖各浓度对羟自由基有不同程度的清除能力，随着多糖浓度的升高，羟自由基清除率也不断递增。叶多糖、果实多糖在浓度为0.040 mg/mL 和0.050 mg/mL时，对羟自由基的清除率差异不明显；叶多糖、果实多糖在浓度为0.040 mg/mL 和0.050 mg/mL 时，对羟自由基的清除率差异不明显；果实多糖在浓度为0.005 mg/mL和0.010 mg/mL 时，对羟自由基的清除率差异不显著。3 种多糖浓度在0.050 mg/mL 时，对羟自由基的清除率均超过50%。叶多糖IC50 值为0.050 mg/mL，果实多糖IC50 值为0.043 mg/mL，茎多糖IC50 值为0.055 mg/mL。从IC50 值看，3 种多糖样品对羟自由基的抗氧化效果为果实多糖＞叶多糖＞茎多糖。
3 结论
本研究采用石油醚对原材料脱脂处理，风干后超声辅助提取大果青扦叶、果实、茎粗多糖，选取料液比、超声时间、超声温度3 个因素的各5 个水平进行单因素试验，比较分析多糖提取率。选取各因素较好的3 个水平设计正交试验，确定最佳提取工艺，并进行体外抗氧化活性研究。
结果显示，大果青扦叶多糖最佳提取条件为料液比1∶30（g/mL）、超声温度60 ℃、超声时间60 min；果实多糖最佳提取条件为料液比1∶25（g/mL）、超声温度70 ℃、超声时间70 min；茎多糖最佳提取条件为料液比1∶30（g/mL）、超声温度70 ℃、超声时间70 min。在最佳提取条件下，叶多糖提取率为4.24%，果实多糖提取率为3.99%，茎多糖提取率为3.95%。该工艺用于大果青扦多糖类物质的提取简单可行，具有较高参考价值。通过对大果青扦叶多糖、果实多糖、茎多糖进行抗氧化活性分析，发现不同多糖样品的不同浓度均表现出一定的抗氧化能力，并且抗氧化能力均随着多糖浓度的增加而逐渐升高，表明多糖的质量浓度与其抗氧化效果存在良好的量效关系。综合分析可知，大果青扦叶多糖的提取率最高，抗氧化性更好，为便于后续研究，可选取大果青扦叶作为原料探究其多糖类物质在食品、医药等领域的应用。
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