莼菜(Brasenia schreberi),别称马蹄菜、水葵等,属睡莲科的莼属,多年生水生宿根草本植物[1],广泛分布于东亚、大洋洲、西非和北美地区。莼菜是一种珍贵的水生蔬菜,富含多糖、蛋白质、氨基酸、维生素和微量元素等,具有良好的食用和药用价值[2-3]。莼菜具有清热补血、润肺解毒、利尿消肿、健胃促消化、止泻止呕、增强免疫力、抗肿瘤、降三高、抗衰老等功效[4-5],对胃溃疡、肿痛、黄疸和热痢等有治疗作用[6-8],有“水中人参”、“美容佳蔬”和“抗癌佳品”之称[9]。莼菜多糖(Brasenia schreberi polysaccharide,BSP)是莼菜中含有的一种重要的生物活性成分,具有提高免疫力和改善亚健康的作用[10-11]。
目前,植物多糖的提取主要有热水浸提、酶解[12]、微波辅助、超声波辅助[13]和微波协同酶解[14]等方法,这些方法都各有优缺点。高压脉冲电场(high intensity pulsed electric fields,HPEP)是一种新兴的现代高新提取技术,其原理是利用瞬间脉冲高压破壁植物细胞壁,使细胞膜电位混乱,使其可逆或不可逆破裂,促进极性分子在细胞内定向排列,功效成分溶出。该技术具有非热性传递均匀、效率高、能耗低、环保等优点,广泛应用于天然产物功能成分的提取[15-19]。酶解法是利用酶破坏细胞壁,溶出功效成分。高压脉冲电场耦合复合酶技术是一种新型、先进的天然产物提取技术,具有提取率高、提取温度低、提取时间短、能耗低、对活性成分损伤小等优点[20-21]。然而,高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP的研究尚未见报道。因此,本研究采用高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP,在单因素试验的基础上,通过正交试验优化提取工艺,以期提高BSP提取率,为后续BSP的开发利用提供基础。
莼菜(人工种植):苏州东山东湖莼菜厂;纤维素酶(20 000 U/g):河北利华生物科技有限公司;木瓜蛋白酶(100 000 U/g):陕西源优生物科技有限公司;果胶酶(20 000 U/g):北京蓝博斯特生物有限公司;硫酸、无水乙醇、葡萄糖、苯酚、氢氧化钠、柠檬酸、磷酸氢二钠(均为分析纯):国药集团化学试剂有限公司。
DE-100型高精度双极高压静电场发生器:宁波新芝生物科技有限公司;RE-3000A旋转蒸发器:上海耀特仪器设备有限公司;760CRT紫外-可见分光光度计:上海仪电分析仪器有限公司;PE-28酸度计:北京梅特勒-托利多仪器有限公司;D2015W电动搅拌器:上海梅颖浦仪器有限公司。
1.3.1 莼菜粉的制备
将莼菜经氢氧化钠溶液脱去体外胶质后,再用清水淋洗,热风干燥,匀浆机剪切制得莼菜粉,备用。
1.3.2 BSP的提取
莼菜粉→按比例加水搅拌均匀→高压脉冲电场提取→取出调节pH值(柠檬酸和磷酸氢二钠缓冲液)→复合酶法提取→提取液Sevag法[22]脱蛋白→离心(5 000 r/min,10 min)→上清液减压浓缩→加乙醇沉淀(3倍体积95%乙醇)→静置(放入4℃冰箱,静置24h)→离心(5 000 r/min,10 min)→真空冷冻干燥→莼菜粗多糖。
1.3.3 BSP测定
BSP测定采用苯酚-硫酸法[23]。
1.3.4 BSP提取率计算
BSP提取率计算公式如下。
1.3.5 高压脉冲电场提取BSP试验设计
1.3.5.1 高压脉冲电场提取BSP的单因素试验设计
按1.3.2的方法,称取10 g莼菜粉5份进行高压脉冲电场提取BSP,研究不同因素对BSP提取率的影响。固定条件:料液比 1∶30(g/mL),电场强度 20 kV/cm,脉冲数8,提取时间30 min。分别设定料液比为1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50(g/mL),电场强度为 10、15、20、25、30 kV/cm,脉冲数为 2、4、6、8、10,提取时间为10、20、30、40、50 min,进行单因素试验。每组重复3 次,取平均值。
1.3.5.2 高压脉冲电场提取BSP的正交试验设计
在预试验和单因素试验的基础上,选取表1列出的4个因素,采用L9(34)正交试验优化提取工艺。试验水平设计见表1。
表1 正交试验因素水平
Table 1 Factor levels of orthogonal experimental design
水平(kV/cm) C脉冲数 D提取时间/min 1 1∶20 15 6 20 2 1∶30 20 8 30 3 1∶40 25 10 40因素A料液比/(g/mL)B电场强度/
1.3.6 高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP试验设计
1.3.6.1 高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP的单因素试验设计
经高压脉冲电场提取后,再按1.3.2的方法称取10 g莼菜粉5份耦合复合酶法提取BSP,研究不同因素对BSP提取率的影响。固定条件:复合酶(木瓜蛋白酶∶纤维素酶∶果胶酶质量比为1∶1∶1)添加量 2.5%,酶解pH4.5,酶解温度50℃,酶解时间50 min。分别设定复合酶添加量1.0%、1.5%、2.0%、2.5%和3.0%,酶解pH3.0、3.5、4.0、4.5 和 5.0,酶解温度 30、40、50、60、70℃,酶解时间 20、30、40、50、60 min,进行单因素试验。每组重复3次,取平均值。
1.3.6.2 高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP的正交试验设计
在预试验和单因素试验的基础上,选取表2列出的4个因素,采用L9(34)正交试验优化提取工艺。试验水平设计见表2。
表2 正交试验因素水平
Table 2 Factor levels table of orthogonal experimental design
水平H酶解时间/min 1 2.0 4.0 40 40 2 2.5 4.5 50 50 3 3.0 5.0 60 60因素E复合酶添加量/% F酶解pH值 G酶解温度/℃
1.3.7 数据处理
试验所得数据均为3个平行测定的结果的平均值。试验数据采用Excel整理,采用正交设计助手进行数据分析。
2.1.1 料液比对BSP提取率的影响
料液比对BSP提取率的影响见图1。
图1 料液比对BSP提取率的影响
Fig.1 Effect of solid-liquid ration on the BSP extraction rate
由图1可知,BSP提取率随着溶剂用量的增加先升高后趋于平缓。这是因为溶剂用量增加,莼菜细胞与其接触面之间的浓度差增大,促进了多糖的浸出,提取率升高。但当溶剂用量达到一定值时,多糖基本完全被溶出,提取率不再显著升高,而趋于稳定。这与代名君等[24]的研究结果趋势相似。因此,料液比1∶30(g/mL)为佳。
2.1.2 电场强度对BSP提取率的影响
电场强度对BSP提取率的影响见图2。
图2 电场强度对BSP提取率的影响
Fig.2 Effect of electric field intensity on the BSP extraction rate
由图2可知,BSP提取率随着电场强度的增加先升高再降低。这是因为电场强度增加,莼菜细胞破坏增多,极性溶剂运动加快,进入细胞的溶剂增多,多糖溶出更易,提取率升高。当电场强度≥20 kV/cm时,过大的电场强度会使多糖降解,提取率降低。这与Wang Ke等[25]的研究结果趋势相似。因此,电场强度20kV/cm为佳。
2.1.3 脉冲数对BSP提取率的影响
脉冲数对BSP提取率的影响见图3。
图3 脉冲数对BSP提取率的影响
Fig.3 Effect of the number of pulses on the BSP extraction rate
由图3可知,BSP提取率随着脉冲数的增加先升高再降低。这是因为脉冲次数增加,电场作用于提取液的程度和频率增加,莼菜细胞破坏的程度和数量增加,提取率升高。当脉冲数≥8时,过大的电场和脉冲频率增强了多糖的电解,促使多糖部分降解,提取率降低。这与Zhou Yajun等[26]的研究结果趋势相似。因此,脉冲数8为佳。
2.1.4 提取时间对BSP提取率的影响
提取时间对BSP提取率的影响见图4。
图4 提取时间对BSP提取率的影响
Fig.4 Effect of extraction time on the BSP extraction rate
由图4可知,BSP提取率随着提取时间的延长先升高后降低。这是因为提取时间增加,高压电场作用程度增加,细胞破裂程度和数量增多,提取率升高。当提取时间≥30 min时,细胞基本完全破裂,再继续延长提取时间,多糖结构会部分被破坏,提取率降低。这与周亚军等[27]的研究结果趋势相似。因此,提取时间30 min为佳。
2.1.5 高压脉冲电场提取BSP正交试验结果
高压脉冲电场提取BSP的正交试验结果见表3。
表3 正交试验结果
Table 3 The result of orthogonal experimental design
试验编号度/(kV/cm)C脉冲数D提取时间/min 1 1∶20 15 6 20 7.68 2 1∶20 20 8 30 8.53 3 1∶20 25 10 40 9.27 4 1∶30 15 8 40 10.28 5 1∶30 20 10 20 9.14 6 1∶30 25 6 30 10.73 7 1∶40 15 10 30 9.57 8 1∶40 20 6 40 9.11 9 1∶40 25 8 20 9.34 k1 8.493 9.053 9.390 8.647 k2 9.993 9.177 9.287 9.477 k3 9.417 9.673 9.227 9.780 R 1.500 0.620 0.163 1.133 A料液比/(g/mL)B电场强因素 BSP提取率/%
高压脉冲电场提取BSP的方差分析结果见表4。
表4 方差分析结果
Table 4 The variance analysis results
注:* 表示差异显著,P<0.05。
因素 偏差平方和 自由度 F比 F临界值 显著性A料液比 3.435 2 83.780 19.000 *B电场强度 0.646 2 15.756 19.000 C脉冲数 0.041 2 1.000 19.000 D提取时间 2.065 2 50.366 19.000 *误差 0.04 2
由表3、表4结果分析可知,各因素影响关系为:A>D>B>C。料液比和提取时间对BSP提取率的影响较大,达到显著水平,其它不显著。通过k值的分析,其最佳工艺参数为:料液比1∶30(g/mL),提取时间40 min,电场强度25 kV/cm,脉冲数6。在上述最佳条件下做验证试验,平行验证3次,BSP提取率为10.75%(3次平均值)。
在高压脉冲电场提取BSP的最佳工艺条件下,再进一步耦合复合酶法提取BSP。
2.2.1 复合酶添加量对BSP提取率的影响
复合酶添加量对BSP提取率的影响见图5。
图5 复合酶添加量对BSP提取率的影响
Fig.5 Effect of compound enzyme addition on the BSP extraction rate
由图5可知,BSP提取率随复合酶添加量的增加先升高再趋于稳定。这是因为,酶添加量的增加,加大了与底物接触面积,酶解更充分,多糖溶出增多,提取率升高。当复合酶添加量≥2.5%时,酶解反应基本完全,再继续增加添加量,多糖提取率也不会显著变化而是趋于稳定。HUYNH等[28]的研究也表明酶添加量过多,酶解已完全,对提取率影响不明显而趋于稳定。因此,复合酶添加量2.5%为佳。
2.2.2 酶解pH值对BSP提取率的影响
酶解pH值对BSP提取率的影响见图6。
图6 酶解pH值对BSP提取率的影响
Fig.6 Effect of enzymolysis pH value on the BSP extraction rate
由图6可知,BSP提取率随着酶解pH值的增大呈先升高再降低的趋势。这是因为,pH值是影响酶活性的重要因素之一,酶解反应在最适宜pH值时,酶活性最高,酶解最充分,提取率也最高,反之提取率降低。这与孟利娜等[29]的研究结果趋势相似。因此,酶解pH值为4.5最佳。
2.2.3 酶解温度对BSP提取率的影响
酶解温度对BSP提取率的影响见图7。
图7 酶解温度对BSP提取率的影响
Fig.7 Effect of enzymolysis temperature on the BSP extraction rate
由图7可知,BSP提取率随着酶解温度的升高呈先升高再降低的趋势。这是因为酶解温度升高,酶活性增强,酶解反应加快,多糖溶出增多,提取率升高;当酶解温度≥50℃后,酶活性开始降低,再继续增加酶解温度,部分酶会失去活性,提取率降低。这与李晓等[30]的研究结果趋势基本一致。因此,酶解温度50℃最佳。
2.2.4 酶解时间对BSP提取率的影响
酶解时间对BSP提取率的影响见图8。
图8 酶解时间对BSP提取率的影响
Fig.8 Effect of enzymolysis time on the BSP extraction rate
由图8可知,BSP提取率随着酶解时间的延长先升高再趋于平缓。这是因为,酶解时间过短,酶解程度较低,酶解不充分,多糖溶出不多;而酶解时间达到最佳时间后,酶解已经完全,再延长酶解时间,提取率也不会明显升高而趋于平缓。这与Sowbhagya等[31]的研究结果趋势基本相似。因此,酶解时间50 min最佳。
2.2.5 高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP正交试验结果
高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP正交试验结果见表5。
表5 正交试验结果
Table 5 The result of orthogonal experimental design
试验序号H酶解时间/min 1 2.0 4.0 40 40 10.51 2 2.0 4.5 50 50 11.64 3 2.0 5.0 60 60 10.43 4 2.5 4.0 50 60 12.25 5 2.5 4.5 60 40 12.19 6 2.5 5.0 40 50 11.83 7 3.0 4.0 60 50 10.64 8 3.0 4.5 40 60 11.56 9 3.0 5.0 50 40 9.71 k1 10.860 11.133 11.300 10.803 k2 12.090 11.797 11.200 11.370 k3 10.637 10.657 11.087 11.413 R 1.453 1.140 0.213 0.610 E复合酶添加量/%F酶解pH值因素 BSP提取率/%G酶解温度/℃
高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP的方差分析结果见表6。
表6 方差分析结果
Table 6 The variance analysis results
注:* 表示差异显著,P<0.05。
因素 偏差平方和 自由度 F比 F临界值 显著性E复合酶添加量 3.675 2 54.044 19.000 *F酶解pH值 1.967 2 28.192 6 19.000 *G酶解温度 0.068 2 1.000 19.000 H酶解时间 0.695 2 10.221 19.000误差 0.07 2
由表5、表6结果分析可知,各因素的影响顺序为:E>F>H>G,复合酶添加量和酶解pH值对BSP提取率的影响较大,达到了显著水平,其它不显著。通过对k值的分析,高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP的最佳工艺参数为:E2F2G1H3,即复合酶添加量2.5%,酶解pH值4.5,酶解时间60 min,酶解温度40℃。在此最佳条件下进行验证试验,平行验证3次,得到BSP提取率为12.27%(3次平均值)。
本试验为了比较单一提取方法提取BSP和复合提取方法提取BSP的不同,试验先进行高压脉冲电场法提取BSP,再进行高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP,并对其工艺进行优化,得到最佳工艺参数为:料液比 1∶30(g/mL),提取时间 40 min,电场强度 25 kV/cm,脉冲数6;然后再耦合复合酶法提取,复合酶添加量2.5%,酶解pH值4.5,酶解时间60 min,酶解温度40℃,该条件下,BSP提取率为12.27%。本试验所用的高压脉冲电场耦合复合酶法提取BSP,与单一的高压脉冲电场提取相比,其提取率明显提高,是一种新的提取BSP的方法,为后续BSP的开发利用提供基础。
[1] 崔杰,何正有,屠银芳,等.莼菜多糖的分离、纯化及结构初步研究[J].中成药,2018,40(4):990-993.CUI Jie,HE Zhengyou,TU Yinfang,et al.Preliminary study on the isolation,purification and structure of polysaccharides from Brasenia schreberi[J].Chinese Traditional Patent Medicine,2018,40(4):990-993.
[2] 孙海红,薛鲁燕,孙永红,等.莼菜多糖的提取及理化性质分析[J].安徽农业科学,2021,49(2):158-161.SUN Haihong,XUE Luyan,SUN Yonghong,et al.Study on extraction and physicochemical properties of polysaccharide from Brassica schreberi[J].Journal of Anhui Agricultural Sciences,2021,49(2):158-161.
[3] 李燕,柯剑鸿,焦大春,等.莼菜的营养价值及其应用研究进展[J].长江蔬菜,2018(18):36-39.LI Yan,KE Jianhong,JIAO Dachun,et al.Research progress on nutritional value and application of Brasenia schreberi[J].Journal of Changjiang Vegetables,2018(18):36-39.
[4] 吴洪梅,吕泽芳,张昭,等.四大莼菜产区商品成分种类和质量分数测定及比较研究[J].西南大学学报(自然科学版),2017,39(5):76-82.WU Hongmei,LÜ Zefang,ZHANG Zhao,et al.A comparative study of the commercially valuable components of water shield(Brasenia schreberi)from 4 cultivation areas in China[J].Journal of Southwest University(Natural Science Edition),2017,39(5):76-82.
[5] 刘翠俐,于秋英.莼菜多糖粘胶降血糖作用的研究[J].职业与健康,2004,20(6):142-143.LIU Cuili,YU Qiuying.Study on the effect of Chuncai polysaccharide on lowering blood sugar[J].Occupation and Health,2004,20(6):142-143.
[6] 王慧芳,谈如蓝.莼菜的药用价值与综合开发应用[J].现代食品,2016(13):45-46.WANG Huifang,TAN Rulan.Water shield medicinal values and comprehensive development and application[J].Modern Food,2016(13):45-46.
[7] 巩江,倪士峰,司衍乐,等.莼菜药学研究概述[J].安徽农业科学,2009,37(10):4489-4490.GONG Jiang,NI Shifeng,SI Yanle,et al.Overview on pharmaceutical research of Brasenia schreber J.F.Gmel[J].Journal of Anhui Agricultural Sciences,2009,37(10):4489-4490.
[8] XIAO H,CAI X,FAN Y,et al.Antioxidant activity of water-soluble polysaccharides from Brasenia schreberi[J].Pharmacogn Mag,2016,12(47):193-197.
[9]孙树侠,王强,张清,等.药食兼用型植物——莼菜[J].中国食物与营养,2000,6(5):18-19.SUN Shuxia,WANG Qiang,ZHANG Qing,et al.Plant for drug and food:Brasenia schreberi[J].Food and Nutrition in China,2000,6(5):18-19.
[10]刘美玉,习向银,罗丽娟,等.莼菜资源利用研究综述及展望[J].长江蔬菜,2011(10):7-10.LIU Meiyu,XI Xiangyin,LUO Lijuan,et al.Research summary and prospect on water shield(Brasenia schreberi J.F.Gmel.)resource utilization[J].Journal of Changjiang Vegetables,2011(10):7-10.
[11]魏琍峻.有机莼菜种植项目可行性研究分析[J].南方农机,2016,47((12):68-70.WEI Lijun.Analysis on feasibility study of organic Brasenia schreberi planting project[J].Southern Agricultural Machinery,2016,47(12):68-70.
[12]XU X F,YAN H D,TANG J,et al.Polysaccharides in Lentinus edodes:isolation,structure,immunomodulating activity and future prospective[J].Critical Reviews in Food Science and Nutrition,2014,54(4):474-487.
[13]ZHANG Y Y,LI S,WANG X H,et al.Advances in lentinan:Isolation,structure,chain conformation and bioactivities[J].Food Hydrocolloids,2011,25(2):196-206.
[14]黄越,周春晖,黄惠华.不同提取方法猴头菇粗多糖的表征及其抗氧化活性的比较[J].食品工业科技,2017,38(3):80-86.HUANG Yue,ZHOU Chunhui,HUANG Huihua.Characterization and antioxidant activity analysis on the crude Hericium erinaceus polysaccharides extracted by different methods[J].Science and Technology of Food Industry,2017,38(3):80-86.
[15]RAWSON A,PATRAS A,TIWARI B K,et al.Effect of thermal and non thermal processing technologies on the bioactive content of exotic fruits and their products:Review of recent advances[J].Food Research International,2011,44(7):1875-1887.
[16]GUDERJAN M,ELEZ-MARTÍNEZ P,KNORR D.Application of pulsed electric fields at oil yield and content of functional food ingredients at the production of rapeseed oil[J].Innovative Food Science&Emerging Technologies,2007,8(1):55-62.
[17]梁琦,杨瑞金,赵伟,等.高压脉冲电场对油酸的影响[J].食品工业科技,2009,30(4):86-89,92.LIANG Qi,YANG Ruijin,ZHAO Wei,et al.Effects of pulsed electric fields on oleic acid[J].Science and Technology of Food Industry,2009,30(4):86-89,92.
[18]孙建华,韦泽沼,刘斌,等.响应面法优化高压脉冲电场提取匙羹藤总皂苷[J].广西大学学报(自然科学版),2011,36(3):363-368.SUN Jianhua,WEI Zezhao,LIU Bin,et al.Optimization of high voltage pulsed electric field on extraction of the total saponins of Gymnema sylvestre by response surface methodology[J].Journal of Guangxi University(Natural Science Edition),2011,36(3):363-368.
[19]卢沿钢,董全.高压脉冲电场提取食品中天然产物的研究进展[J].食品与机械,2012,28(1):243-246,274.LU Yangang,DONG Quan.Development of pulsed electric field on extraction of natural products in food[J].Food&Machinery,2012,28(1):243-246,274.
[20]纵伟,张薇薇,赵光远,等.超高压提取大蒜渣多糖工艺条件的优化[J].中国调味品,2014,39(8):20-22.ZONG Wei,ZHANG Weiwei,ZHAO Guangyuan,et al.Optimization of process conditions for polysaccharides from garlic residues by ultra-high pressure method[J].China Condiment,2014,39(8):20-22.
[21]李亚辉,马艳弘,黄开红,等.响应面法优化复合酶提取芦荟多糖工艺及其抗氧化活性分析[J].食品科学,2014,35(18):63-68.LI Yahui,MA Yanhong,HUANG Kaihong,et al.Optimization of enzymatic hydrolysis conditions for the extraction of Aloe polysaccharides using response surface methodology and assessment of their antioxidant activity[J].Food Science,2014,35(18):63-68.
[22]崔亦华,崔英德,易国斌.应用广泛的天然多糖及其提取方法[J].广州化工,2002,30(3):7-9.CUI Yihua,CUI Yingde,YI Guobin.Widely application and it′s extraction methods of the natural polysaccharide[J].Guangzhou Chemical Industry and Technology,2002,30(3):7-9.
[23]池源,王丽波.苯酚-硫酸法测定南瓜籽多糖含量的条件优化[J].食品与机械,2014,30(1):89-92.CHI Yuan,WANG Libo.Study on phenol-sulfuric acid method for determination of polysaccharide content in pumpkin seeds[J].Food&Machinery,2014,30(1):89-92.
[24]代名君,尤丽新,文连奎,等.高压脉冲电场辅助提取葛花黄酮工艺优化[J].食品研究与开发,2016,37(23):94-98,108.DAI Mingjun,YOU Lixin,WEN Liankui,et al.Technology optimization of total flavonoids extraction from Pueraria lobata by the high-intensity pulsed electric fields assistance[J].Food Research and Development,2016,37(23):94-98,108.
[25]WANG K,WANG Y,LIN S Y,et al.Analysis of DPPH inhibition and structure change of corn peptides treated by pulsed electric field technology[J].Journal of Food Science and Technology,2015,52(7):4342-4350.
[26]ZHOU Y J,HE Q,ZHOU D.Optimization extraction of protein from mussel by high-intensity pulsed electric fields[J].Journal of Food Processing and Preservation,2017,41(3):e12962.
[27]周亚军,李圣桡,王淑杰,等.高压脉冲电场协同酶法辅助提取玫瑰精油工艺优化[J].食品科学,2020,41(6):270-277.ZHOU Yajun,LI Shengrao,WANG Shujie,et al.Optimization of extraction of rose essential oil by high intensity pulsed electric field combined with enzymatic treatment-assisted steam distillation[J].Food Science,2020,41(6):270-277.
[28]HUYNH N T,SMAGGHE G,GONZALES G B,et al.Enzyme-assisted extraction enhancing the phenolic release from cauliflower(Brassica oleracea L.var.Botrytis)outer leaves[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2014,62(30):7468-7476.
[29]孟利娜,于敬,许静,等.酶法辅助提取北苍术挥发油的工艺及成分分析[J].中成药,2013,35(4):844-847.MENG Lina,YU Jing,XU Jing,et al.Enzymatic assisted extraction of volatile oil from Atractylodes lancea and its component analysis[J].Chinese Traditional Patent Medicine,2013,35(4):844-847.
[30]李晓,刘艳芳.酶法提取生姜精油的研究 [J].中国调味品,2009,34(12):67-69.LI Xiao,LIU Yanfang.Study on extraction of ginger essential oil by enzyme treatment[J].China Condiment,2009,34(12):67-69.
[31]SOWBHAGYA H B,SRINIVAS P,PURNIMA K T,et al.Enzymeassisted extraction of volatiles from cumin (Cuminum cyminum L.)seeds[J].Food Chemistry,2011,127(4):1856-1861.
Optimization of Polysaccharide Extraction from Brasenia schreberi
张守花,张新海,刘延奇,等.莼菜多糖的提取工艺优化研究[J].食品研究与开发,2021,42(15):138-144.
ZHANG Shouhua,ZHANG Xinhai,LIU Yanqi,et al.Optimization of Polysaccharide Extraction from Brasenia schreberi[J].Food Research and Development,2021,42(15):138-144.