金银花（Lonicera japonica Thunb.）是忍冬科忍冬属多年生半常绿藤植物[1],主要分布于河南、山东、河北、甘肃等地。金银花在我国具有悠久的栽培历史,入药部位主要为晾干的花蕾或刚绽放的花朵,1995 年被列入《中华人民共和国药典》,目前已有500 多种含有金银花成分的处方被用于治疗各种疾病,因此其经济、食用及药用价值较高,属药食同源植物。金银花富含黄酮类、多糖类、有机酸类、挥发油类和环烯醚萜苷类等多种活性成分,具有增强免疫[2]、抗氧化[3]、抑制淀粉样蛋白肽β （amyloid-beta,Aβ）[4]沉积、降血糖[5]和消炎[6-7]等作用,被广泛应用于医药、食品、化妆品、保健品及畜牧等领域。
金银花多糖（Lonicera japonica Thunb. polysaccharide,LJP） 是金银花中重要的生物活性成分之一,属于一种低毒且副作用较小的天然大分子物质。近年来,随着对金银花多糖的深入研究,发现金银花产地、种类不同,其多糖结构也会有所差异,进而影响其生物活性。但目前关于金银花多糖的研究仅停留在单个产区上,有关多个产区的金银花多糖综合性评价分析鲜有报道。因此,本试验以河南封丘（FQ）、河北巨鹿（JL）、甘肃通渭（TW）、山东平邑（PY）、河南林州（LZ）、河南开封（KF）6 个产地的金银花为研究对象,对金银花中生物活性成分多糖进行提取后测定其含量、理化性质、抗氧化能力,以明确金银花多糖在不同产地中的含量和抗氧化能力的差异,以期为筛选出具有不同功能的金银花产区提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
金银花：市售；1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH）：东京化成工业株式会社；无水乙醇、苯酚、浓硫酸、磷酸：天津市科密欧化学试剂有限公司；葡萄糖标准品（纯度99%）：天津市凯通化学试剂有限公司；2,2-二氮-双（3-乙基苯并噻唑-6-磺酸）二铵盐[2,2′-azino-bis-（3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid）,ABTS]、考马斯亮蓝G-250、牛血清蛋白、三氯乙酸：北京索莱宝科技有限公司；四硼酸钠：天津市永大化学试剂有限公司；间羟联苯：上海源叶生物科技有限公司；氢氧化钠：天津市富宇精细化工有限公司。以上化学试剂均为分析纯。
1.2 仪器与设备
BGZ-70 鼓风干燥箱：上海一恒科学仪器有限公司；SB25-12DT 超声波清洗机：宁波新芝生物科技有限公司；N-1300S-WB 旋转蒸发仪：东京理化器械株式会社；C1379 粉碎机：温州顶礼医疗器械有限公司；L420-A 台式低速自动平衡离心机：湖南湘仪仪器有限公司；Cary 60 UV-Vis 紫外可见分光光度计：安捷伦科技有限公司；JA2003N 电子天平：上海精密科学仪器有限公司。
1.3 试验方法
1.3.1 金银花预处理
将新鲜干净的金银花置于35 ℃鼓风干燥箱中烘干后粉碎,过筛,备用。
1.3.2 金银花多糖的提取
参考吕欣等[8]的方法并稍作修改。按照料液比1∶30（ g/mL）称取金银花粉末与蒸馏水置于500 mL 烧杯中,搅拌均匀后,置于超声波清洗机中处理60 min,4 000 r/min 离心20 min,保留上清液,用三氯乙酸（trichloroacetic acid,TCA）法除蛋白,溶液减压浓缩至一定体积后加入4 倍体积无水乙醇静置过夜,4 000 r/min离心25 min,保留沉淀,将沉淀置于45 ℃鼓风干燥箱中烘干至恒重即得金银花粗多糖。金银花多糖得率（N,%）采用以下公式进行计算。
式中：N 多糖为金银花多糖的质量,g；N 金银花为金银花粉末的质量,g。
1.3.3 金银花多糖化学组成测定
1.3.3.1 总糖含量
金银花多糖中总糖含量测定采用苯酚硫酸法[9]。以葡萄糖标准浓度为横坐标x,以吸光度为纵坐标y,绘制标准曲线,其方程为y=6.701 4x+0.213 9,R2=0.993 3。配制0.1 mg/mL 的金银花样品溶液,准确吸取1 mL 后加入1 mL 去离子水,再加入1 mL 5%苯酚溶液及5 mL 浓硫酸溶液,混合均匀后静置40 min,测定490 nm 处的吸光度。将其吸光度代入标准曲线方程中即可计算金银花多糖的质量浓度,进一步通过下列公式计算得出金银花多糖中的总糖含量（X,%）。
式中：C 为金银花多糖质量浓度,mg/mL；V 为多糖溶液体积,mL；M 为金银花质量,mg。
1.3.3.2 蛋白质含量
金银花多糖中蛋白质含量测定采用考马斯亮蓝法[10]。以蛋白质标准溶液浓度为横坐标x,以吸光度为纵坐标y,绘制标准曲线,其方程为y=2.223 9x+0.253 2,R2=0.991 6。配制0.1 mg/mL 的金银花样品溶液,准确吸取1 mL 后加入1 mL 去离子水,再加入5 mL 考马斯亮蓝溶液,混合均匀后静置5 min,测定595 nm 处的吸光度。将其吸光度代入标准曲线方程中即可计算金银花多糖中的蛋白质含量。
1.3.3.3 糖醛酸含量
金银花多糖中糖醛酸含量测定采用间羟联苯法。以葡萄糖醛酸标准溶液浓度为横坐标x,以吸光度为纵坐标y,绘制标准曲线,其方程为y=3.461 6x+0.046 4,R2=0.999 3。配制0.1 mg/mL 的金银花样品溶液,准确吸取1 mL 后加入3 mL 四硼酸钠-硫酸溶液,沸水浴加热5 min 后快速冷却至室温,再加入0.05 mL 间羟联苯溶液,混合均匀后测定520 nm 处的吸光度。将其吸光度代入标准曲线方程中即可计算金银花多糖中的糖醛酸含量。
1.3.4 金银花多糖理化性质测定
1.3.4.1 持水性和持油性
参考Ktari 等[11]的方法并稍作修改。配制质量浓度为1% 的金银花多糖溶液于离心管中,漩涡振荡混合均匀后静置60 min,4 000 r/min 离心10 min,保留沉淀,吸取表面水分或油脂后称量沉淀的质量。持水性（Y,%）和持油性（B,%）按下式进行计算。
式中：M1 为吸取表面水分后的沉淀物的质量,g；M2 为吸取表面油脂后的沉淀物的质量,g；M0 为称取金银花多糖样品的质量,g。
1.3.4.2 溶解度、膨胀力及吸水性指数
参考Okonkwo 等[12]的方法并稍作修改。配制质量浓度为1%的金银花多糖溶液于离心管中,漩涡振荡混合均匀后静置120 min,4 000 r/min 离心10 min,保留沉淀,并将上清液烘干。金银花多糖的溶解度（S,%）、膨胀力（P,%）和吸水性指数（W,%）按下式进行计算。
式中：M2 为上清液烘干物质的质量,g；M1 为沉淀物的质量,g；M0 为称取金银花多糖样品的质量,g。
1.3.5 多糖体外抗氧化活性测定
1.3.5.1 ABTS+·清除率
参考黄明浩等[13]及Deseo 等[14]的方法并稍作修改。配制0.125、0.250、0.500、1.000、2.000 mg/mL 和4.000 mg/mL 的金银花多糖溶液,分别取0.4 mL 不同质量浓度的样品溶液与4 mL ABTS 工作液混合后在室温下避光反应 6 min,测定734 nm 处的吸光度。其中,ABTS 工作液的制备方法为吸取1 mL ABTS 储备液（7.4 mmol/L）和1 mL K2S2O8 储备液（2.6 mmol/L）,室温下避光保存过夜待用,用磷酸盐缓冲液（pH7.4）将上述混合液稀释至吸光度为0.68～0.72。ABTS+·清除率（A,%）计算公式如下。
式中：A0 为对照组吸光度；A1 为待测样品吸光度。
1.3.5.2 总还原能力
参考Xiao 等[15]的方法并稍作修改。配制0.125、0.250、0.500、1.000、2.000 mg/mL 和4.000 mg/mL 的金银花多糖溶液,分别取0.2 mL 不同质量浓度的样品溶液与1.0 mL 0.2 mol/L 磷酸盐缓冲液（pH6.6）、体积分数为1%铁氰化钾溶液混合,50 ℃加热20 min 后加入1.0 mL 体积分数为10% 的三氯乙酸溶液,再加入0.2 mL 体积分数为0.1% 三氯化铁溶液,混合均匀后静置10 min,测定700 nm 处的吸光度。总还原能力（Z,%）计算公式如下。
式中：A0 为对照组吸光度；A1 为待测样品吸光度。
1.3.5.3 DPPH·清除率
参考Zhao 等[16]的方法并稍作修改。配制0.125、0.250、0.500、1.000、2.000 mg/mL 和4.000 mg/mL 的金银花多糖溶液,分别取3 mL 不同质量浓度的样品溶液与3 mL DPPH 溶液（0.1 mmol/L）充分混合,室温下避光反应30 min,测定517 nm 处吸光度,DPPH·清除率（D,%）计算公式如下。
式中：A1 为待测样品吸光度；A2 为对照样品吸光度；A0 为空白样品吸光度。
1.4 数据处理
所有数据均采用SPSS 25.0 进行分析,图表主要由Excel 2016 和Origin 2021 绘制。采用Duncan 检验计算95%置信区间,P<0.05 为差异显著。IC50 计算使用GraphPad Prism9.5.0 软件。
2 结果与分析
2.1 金银花多糖得率
6 个产地金银花多糖得率如图1 所示。
图1 不同产地金银花多糖得率比较
Fig.1 Comparison of the yield of LJP from different producing areas
不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图1 可知,各个产地之间金银花多糖得率具有显著性差异（P<0.05）。河北巨鹿金银花多糖得率最高,为9.45%；甘肃通渭金银花多糖得率最低,为4.61%。
2.2 金银花多糖中总糖含量
不同产地金银花多糖中总糖含量差异如图2 所示。
图2 不同产地金银花多糖中总糖含量的比较
Fig.2 Comparison of total sugar content in LJP from different producing areas
不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图2 可知,甘肃通渭金银花多糖中总糖含量最高,为62.32%；山东平邑和河北巨鹿金银花多糖中总糖含量分别为51.90% 和52.24%,这两个产地金银花多糖中总糖含量与其他产区相比具有显著性差异（P<0.05）。河南3 个地区金银花多糖中总糖含量均低于其他产区,可能是由环境不同、温度不同所导致。
2.3 金银花多糖中蛋白质含量
由于TCA 法无法将蛋白完全除去,因此在进行多糖提取的过程中会保留一部分蛋白质。不同产地金银花多糖中蛋白质含量如图3 所示。
图3 不同产地金银花多糖中蛋白质含量的比较
Fig.3 Comparison of protein content in LJP from different producing areas
不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图3 可知,甘肃通渭金银花多糖中蛋白质含量较高,为4.11%；河南开封金银花多糖中蛋白质含量较低,为1.09%；甘肃通渭金银花多糖中蛋白质含量与河南封丘差异性不显著（P>0.05）,与河南开封、河南林州、河北巨鹿和山东平邑金银花多糖中蛋白质含量呈现显著性差异（P<0.05）。
2.4 金银花多糖中糖醛酸含量
多糖中糖醛酸的存在可以证明该糖是一种酸性糖,糖醛酸含量也会对多糖的抗氧化活性产生影响[17]。不同产地金银花多糖中糖醛酸含量如图4 所示。
图4 不同产地金银花多糖中糖醛酸含量的比较
Fig.4 Comparison of uronic acid content in LJP from different producing areas
不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图4 可知,从6 个产区所提取的金银花多糖均为酸性糖。山东平邑金银花多糖中糖醛酸含量最高,为9.60%；河南林州金银花多糖中糖醛酸含量最低,为4.06%；河南开封金银花多糖中糖醛酸含量与甘肃通渭金银花多糖中糖醛酸含量不具有显著性差异（P>0.05）,但与其他产区金银花多糖中糖醛酸含量呈现显著性差异（P<0.05）。
2.5 金银花多糖持水性和持油性
持水性越大,多糖与水的结合程度越强[18]；持油性越大,多糖的分子量和黏度越大,且可以增加机体的饱腹感[19]。不同产地金银花多糖持水性和持油性差异如图5 所示。
图5 不同产地金银花多糖持水性和持油性比较
Fig.5 Comparison of water-holding capacity and oil-holding capacity of LJP from different producing areas
同一指标不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图5 可知,河南开封金银花多糖的持水性和持油性较大,分别为46.02%和26.83%；河北巨鹿金银花多糖持水性较小,为9.35%；甘肃通渭金银花多糖持油性较小,为12.67%,表明河北巨鹿金银花多糖与水的结合程度较弱,甘肃通渭金银花多糖黏度较小。
2.6 金银花多糖水合特性
不同产地金银花多糖的溶解度、吸水性指数和膨胀力如图6 所示。
图6 不同产地金银花多糖水合特性比较
Fig.6 Comparison of the hydration characteristics of LJP from different producing areas
同一指标不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图6 可知,河南开封和河南封丘、山东平邑之间金银多糖的膨胀力差异性不显著,河南封丘、山东平邑、河北巨鹿和甘肃通渭之间金银花多糖的溶解度差异不显著,吸水性指数差异显著。河北巨鹿金银花多糖膨胀力较大,吸水性指数较大。河南开封金银花多糖溶解度最小,说明该多糖分子量较大,这与持油性结果具有一致性。
2.7 金银花多糖ABTS+·清除率
不同产地金银花多糖的ABTS+自由基清除能力如图7 所示。
图7 不同产地金银花多糖ABTS+·清除能力的比较
Fig.7 Comparison of ABTS+· scavenging ability of LJP from different producing areas
同一多糖浓度不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图7 可知,同一多糖浓度下不同产地的样品之间具有显著性差异（P<0.05）。 当多糖浓度为0.125 mg/mL 时,甘肃通渭金银花多糖表现出较强的ABTS+·清除能力,清除率为16.42%；当多糖浓度为0.250 mg/mL 时,河北巨鹿金银花多糖表现出较强的ABTS+·清除能力,清除率为40.19%；当多糖浓度为0.500 mg/mL 时,河南封丘金银花多糖表现出较强的ABTS+·清除能力,清除率为69.65%；当多糖浓度为1.000 mg/mL 和2.000 mg/mL 时,河南林州金银花多糖表现出较强的ABTS+·清除能力,清除率分别为85.16%、89.47%。
图8 为各个产地金银花多糖ABTS+自由基清除能力的IC50 变化趋势。
图8 不同产地金银花多糖ABTS+·清除能力的IC50 比较
Fig.8 Comparison of IC50 of LJP ABTS+· scavenging ability from different producing areas
由图8 可知,ABTS+自由基清除率与其浓度之间具有一定的剂量效应关系。经计算,河南开封、河南封丘、河南林州、山东平邑、河北巨鹿和甘肃通渭 6 个产地金银花多糖ABTS+·清除能力的IC50 分别为0.658 1、0.422 9、0.483 5、0.550 5、0.389 8、0.510 5 mg/mL。河南开封金银花多糖ABTS+·清除能力的IC50 明显高于其他5 个产区,说明河南开封金银花多糖具有较弱的抗氧化能力；河北巨鹿金银花多糖ABTS+·清除能力的IC50 明显低于其他5 个产区,说明河北巨鹿金银花多糖具有较强的ABTS+·清除能力。
2.8 金银花多糖总还原能力
不同产地金银花多糖的总还原能力如图9 所示。
图9 不同产地金银花多糖总还原能力的比较
Fig.9 Comparison of total reducing power of LJP from different producing areas
同一多糖浓度不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图9 可知,6 个产地金银花多糖的总还原能力均低于50%。当多糖浓度为0.250 mg/mL 时,河南开封和河南林州、山东平邑和河北巨鹿之间的总还原能力不具有显著性差异（P>0.05）；当多糖浓度为0.125、0.500、1.000 mg/mL 和2.000 mg/mL 时,不同产地金银花多糖的总还原能力具有显著性差异（P<0.05）。对于总还原能力而言,当多糖浓度为0.125～1.000 mg/mL时,甘肃通渭金银花多糖表现出较好的抗氧化能力,山东平邑金银花多糖表现出较弱的抗氧化能力；当多糖浓度为2.000 mg/mL 时,河南林州金银花多糖的总还原能力较强。
不同产地金银花多糖总还原能力的IC50 变化趋势如图10 所示。
图10 不同产地金银花多糖总还原能力的IC50 比较
Fig.10 Comparison of IC50 of total reducing power of LJP from different producing areas
由图10 可知,不同产地金银花多糖总还原能力随浓度的升高而增大。经计算,河南开封、河南封丘、河南林州、山东平邑、河北巨鹿和甘肃通渭 6 个产地金银花多糖总还原能力的IC50 分别为4.113 0、3.800 0、2.604 0、2.395 0、3.303 0、3.887 0 mg/mL。河南开封金银花多糖总还原能力的IC50 显著高于其他产区,说明河南开封金银花多糖具有较弱的总还原能力；山东平邑金银花多糖总还原能力的IC50 为2.395 0 mg/mL,说明山东平邑金银花多糖具有较强的总还原能力。河南3 个产区进行对比发现,河南林州金银花多糖具有较强的抗氧化能力,并且河南产区金银花多糖的总还原能力要弱于河北地区。
2.9 金银花多糖DPPH·清除率
DPPH·清除率常被用来评价天然产物的抗氧化活性[20],6 个产地的金银花多糖对DPPH 自由基清除率如图11 所示。
图11 不同产地金银花多糖DPPH·清除能力的比较
Fig.11 Comparison of DPPH· scavenging ability of LJP from different producing areas
同一多糖浓度不同小写字母表示差异显著（P<0.05）。
由图11 可知,6 个产地金银花多糖均对DPPH 自由基清除率呈现剂量效应。当多糖浓度为0.250 mg/mL 时,不同产地金银花多糖的DPPH·清除率具有显著性差异（P<0.05）；当多糖浓度为0.250 mg/mL 时,抗氧化能力较强的是河南开封金银花多糖；当多糖浓度高于1.000 mg/mL 时,河南产区金银花多糖的DPPH·清除率不具有显著性差异（P>0.05）；6 个产地相比,河北巨鹿金银花多糖对DPPH·清除能力较弱。
不同产地金银花多糖DPPH·清除率的IC50 变化趋势如图12 所示。
图12 不同产地金银花多糖DPPH·清除能力的IC50 比较
Fig.12 Comparison of IC50 of DPPH· scavenging ability of LJP from different producing areas
由图12 可知,DPPH·清除率与多糖浓度呈正相关。经计算,河南开封、河南封丘、河南林州、山东平邑、河北巨鹿和甘肃通渭 6 个产地金银花多糖DPPH·清除率 的IC50 分 别 为0.118 1、0.118 8、0.163 9、0.430 8、0.566 0、0.090 4 mg/mL。河北巨鹿金银花多糖具有较高的IC50,说明其抗氧化能力较弱,抗氧化能力较强的是甘肃通渭金银花多糖,河南产区金银花多糖的抗氧化能力要强于山东地区与河北地区。
3 结论
以河南开封金银花、河南封丘金银花、河南林州金银花、山东平邑金银花、河北巨鹿金银花和甘肃通渭金银花为原料,通过超声波法对金银花多糖进行辅助提取,并对其化学组成、理化性质和抗氧化活性进行比较分析。结果表明,不同产地金银花多糖在化学组成、理化性质和抗氧化方面具有显著性差异。化学组成方面,河北巨鹿金银花多糖得率最高,甘肃通渭金银花多糖中总糖含量最高,河南开封金银花多糖中蛋白质含量最低；6 个产地金银花多糖中均含有糖醛酸,且其含量差异较大。理化性质而言,河南开封金银花多糖持水性和持油性较好；河北巨鹿金银花多糖吸水性指数和膨胀力较高；河南开封金银花多糖溶解度较低。就抗氧化性而言,河北巨鹿金银花多糖ABTS+·清除能力的IC50 为0.389 8 mg/mL,表现出较好的ABTS+·清除能力；山东平邑金银花多糖总还原能力的IC50 为2.395 0 mg/mL,表现出较强的总还原能力；甘肃通渭金银花多糖DPPH·清除率的IC50 为0.090 4 mg/mL,表明甘肃通渭金银花多糖具有很强的DPPH·清除能力。
[1]LI Y K, LI W, FU C M, et al. Lonicerae japonicae flos and Lonicerae flos: A systematic review of ethnopharmacology, phytochemistry and pharmacology[J]. Phytochemistry Reviews, 2020, 19(1): 1-61.
[2]ZHOU X N, DONG Q, KAN X Z, et al. Immunomodulatory activity of a novel polysaccharide from Lonicera japonica in immunosuppressed mice induced by cyclophosphamide[J]. PLoS One, 2018, 13(10): e0204152.
[3]ZHOU X N, HE G, MA J M, et al. Protective effect of a novel polysaccharide from Lonicera japonica on cardiomyocytes of mice injured by hydrogen peroxide[J]. BioMed Research International,2020, 2020: 5279193.
[4]LIU Q, FANG J P, WANG P P, et al. Characterization of a pectin from Lonicera japonica Thunb. and its inhibition effect on Aβ42 aggregation and promotion of neuritogenesis[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2018, 107(Pt A): 112-120.
[5]YANG Q X, WANG Q L, DENG W W, et al. Anti-hyperuricemic and anti-gouty arthritis activities of polysaccharide purified from Lonicera japonica in model rats[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2019, 123: 801-809.
[6]WANG Y, SUN M Y, JIN H Y, et al. Effects of Lycium barbarum polysaccharides on immunity and the gut microbiota in cyclophosphamide-induced immunosuppressed mice[J]. Frontiers in Microbiology, 2021, 12: 701566.
[7]TAO S C, REN Z Y, YANG Z R, et al. Effects of different molecular weight polysaccharides from Dendrobium officinale kimura &migo on human colorectal cancer and transcriptome analysis of differentially expressed genes[J]. Frontiers in Pharmacology, 2021,12: 704486.
[8]吕欣, 谭春玲, 麦名娜, 等. 超声辅助酶法提取金银花多糖的工艺优化[J]. 湖南农业科学, 2021(4): 90-95.LV Xin, TAN Chunling, MAI Mingna, et al. Process optimization of ultrasonic-assisted aqueous enzymatic method in the extraction of Lonicera japonica polysaccharides[J]. Hunan Agricultural Sciences,2021(4): 90-95.
[9]LIN X M, JI X L, WANG M, et al. An alkali-extracted polysaccharide from Zizyphus jujuba cv. Muzao: Structural characterizations and antioxidant activities[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2019, 136: 607-615.
[10]BEN ABDALLAH KOLSI R, BEN SALAH H, JARDAK N, et al.Sulphated polysaccharide isolated from Sargassum vulgare: Characterization and hypolipidemic effects[J]. Carbohydrate Polymers,2017, 170: 148-159.
[11]KTARI N, FEKI A, TRABELSI I, et al. Structure, functional and antioxidant properties in Tunisian beef sausage of a novel polysaccharide from Trigonella foenum-graecum seeds[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2017, 98: 169-181.
[12]OKONKWO V C, KWOFIE E M, MBA O I, et al. Impact of thermosonication on quality indices of starch-based sauces[J]. Ultrasonics Sonochemistry, 2021, 73: 105473.
[13]黄明浩, 黄泰奇, 邓丽娟. 响应面法优化白英粗多糖提取工艺及其体外抗氧化活性的分析[J]. 食品工业科技, 2023, 44(22):219-225.HUANG Minghao, HUANG Taiqi, DENG Lijuan. Optimization of Solanum lyratum crude polysaccharide extraction process using response surface methodology and analysis of its in vitro antioxidant activity[J]. Science and Technology of Food Industry, 2023, 44(22):219-225.
[14]DESEO M A, ELKINS A, ROCHFORT S, et al. Antioxidant activity and polyphenol composition of sugarcane molasses extract[J].Food Chemistry, 2020, 314: 126180.
[15]XIAO Y, XING G L, RUI X, et al. Enhancement of the antioxidant capacity of chickpeas by solid state fermentation with Cordyceps militaris SN-18[J]. Journal of Functional Foods, 2014, 10: 210-222.
[16]ZHAO B, WANG X Y, LIU H, et al. Structural characterization and antioxidant activity of oligosaccharides from Panax ginseng C. A.Meyer[J]. International Journal of Biological Macromolecules,2020, 150: 737-745.
[17]YARLEY O P N, KOJO A B, ZHOU C S, et al. Reviews on mechanisms of in vitro antioxidant, antibacterial and anticancer activities of water-soluble plant polysaccharides[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2021, 183: 2262-2271.
[18]SUN C X, CHEN S, DAI L, et al. Structural characterization and formation mechanism of zein-propylene glycol alginate binary complex induced by calcium ions[J]. Food Research International,2017, 100: 57-68.
[19]黄才欢, 欧仕益, 张宁, 等. 膳食纤维吸附脂肪、胆固醇和胆酸盐的研究[J]. 食品科技, 2006, 31(5): 133-136.HUANG Caihuan, OU Shiyi, ZHANG Ning, et al. Research on the adsorption capacity of dietary fiber complexes for fat, cholesterol and bile acid in vitro[J]. Food Science and Technology, 2006, 31(5): 133-136.
[20]樊精敏, 白瑞斌, 王燕萍, 等. 党参低聚糖脱色纯化工艺优化及其抗氧化活性研究[J]. 中成药, 2022, 44(9): 2768-2772.FAN Jingmin, BAI Ruibin, WANG Yanping, et al. Optimization of decolorization and purification process for oligosaccharides from Codonopsis radix and their anti-oxidant activity[J]. Chinese Traditional Patent Medicine, 2022, 44(9): 2768-2772.