水蜜桃属蔷薇科桃属植物,浆汁丰富,果肉柔软,富含葡萄糖、果糖、维生素C 等营养成分,广受消费者喜爱。然而,桃作为呼吸跃变型果实,后熟期很短,且对乙烯敏感,内源乙烯的生成加快了桃的成熟,果肉很快变软[1],易受机械损伤。而且桃主要在高温夏季成熟,损伤处易受微生物侵染发生腐烂变质,很大程度地限制了桃的保鲜期。因此,寻找合理的保鲜技术延长桃果实的贮藏期迫在眉睫。目前,水蜜桃采后保鲜技术主要包括低温贮藏保鲜[2]、涂膜保鲜[3]和气调保鲜[4]等,但存在保鲜技术成本高、易发生冷害、存在安全问题和抑菌效果不明显等缺点。
1-甲基环丙烯(1-methylcyclopropene,1-MCP)是一种乙烯竞争性抑制剂,与乙烯受体不可逆的结合,进而减少乙烯的生成,达到延缓果蔬成熟衰老的目的[5]。1-MCP 处理在蓝莓[6]、娃娃菜[7]和冬枣[8]等多种果蔬中具有良好的保鲜效果。二氧化氯(chlorine dioxide,ClO2)是世界卫生组织确定的安全高效且强力无毒的杀菌剂,能够杀灭大多数的微生物,并且不产生有害代谢物,被广泛用作消毒剂和防腐剂,在新鲜肉类、鱼类等产品的包装消毒中大量应用[9]。近些年逐渐作为保鲜剂和杀菌剂应用在水果和蔬菜中。例如,在木奶果[10]和圣女果[11]中,二氧化氯处理能够提高其果实的贮藏品质。Chen 等[12]研究发现,二氧化氯处理葡萄可明显抑制微生物生长,保持葡萄的品质。相关研究表明,1-MCP 和ClO2 处理对果蔬有提高贮藏保鲜效果的作用,但目前有关1-MCP 结合ClO2 对水蜜桃的保鲜及采后贮藏品质的影响研究鲜见。
本研究以水蜜桃为试验材料,采用1-MCP 和ClO2结合处理的技术,探索在室温下不同处理对水蜜桃贮藏品质、生理指标及抑菌防腐效果的影响,以期为水蜜桃的贮藏保鲜提供理论和技术支持。
水蜜桃品种为‘中桃九号’,采摘时七成熟,采后当天运至江苏省农业科学院农业设施与装备研究所,挑选外观、大小一致且无机械损伤、无病虫害的桃果实作为试验材料。
二氧化氯泡腾片:山东华实药业有限公司;1-MCP:山东奥维特生物科技有限公司;酚酞、2,6-二氯靛酚、抗坏血酸、福林酚、乙醇、水杨酸:上海麦克林生化科技有限公司;三氯乙酸、硫代巴比妥酸、愈创木酚、硫酸亚铁:天津市科密欧化学试剂有限公司;磷酸二氢钾:四川西陇科学股份有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH):上海源叶生物科技有限公司;过氧化氢:天津市大茂化学试剂有限公司。以上化学试剂均为分析纯。
PHSJ-3F pH 计:上海仪电科学仪器股份有限公司;PL202-L 电子天平:梅特勒-托利多仪器(上海)有限公司;UV-1102 紫外可见分光光度计:上海天美科学仪器有限公司;Centrifuge 5804R 离心机:德国艾本德公司;IKA A11 Basic 液氮研磨器:艾卡(广州)仪器设备有限公司;7820A 气相色谱仪:美国Agilent 公司;PAL-1糖度计:北京欧信胜科技有限公司;FT-011 硬度计:广州沪瑞明仪器有限公司;DW-HL530 超低温冰箱:苏州阿尔法生物实验器材有限公司。
试验共设置4 个处理组,1)对照(CK)组:空气熏蒸12 h 后去离子水浸泡处理5 min;2)ClO2 处理组:空气熏蒸12 h 后0.5 mg/L ClO2 溶液浸泡处理5 min;3)1-MCP 处理组:1-MCP 熏蒸12 h 后去离子水浸泡处理5 min;4)ClO2 结合1-MCP(结合)处理组:1-MCP 熏蒸12 h 后0.5 mg/L ClO2 溶液浸泡处理5 min。所有处理晾干结束后装袋,随后放到室内常温[(22±2)℃]条件下贮藏8 d,每组设置3 个生物学重复。在贮藏期间,每隔2 d 取样,每组随机取30 个桃子用于指标测定。用不锈钢刀片取出果肉,将组织样本置于液氮中速冻并存放在-80 ℃超低温冰箱中,用于测定相关指标。
1.4.1 硬度和可溶性固形物含量的测定
硬度用硬度计测定,单位为kg/cm2。可溶性固形物含量用糖度计测定,单位为%。
1.4.2 呼吸强度和乙烯释放量的测定
参照Zhang 等[13]的方法测定,采用气相色谱仪测定呼吸强度和乙烯释放量,呼吸强度单位为CO2 mg/(kg·h),乙烯释放量单位为μL/(kg·h)。
1.4.3 可滴定酸(titratable acid,TA)含量和维生素C含量的测定
可滴定酸含量和维生素C 含量的测定参照孔方南等[10]的方法测定。
1.4.4 丙二醛含量的测定
丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量的测定参照Du 等[14]的方法。
1.4.5 抗氧化物质含量及抗氧化能力的测定
总酚、类黄酮含量、DPPH 自由基和羟基自由基(hydroxyl radical,·OH)的清除率参照安容慧等[7]的方法测定。
1.4.6 抗氧化酶活性的测定
粗酶液的制备:称取1 g 样品,加入2 mL 0.1 mol/L磷酸盐缓冲溶液(pH7.2),混匀后浸提10 min,在4 ℃下以10 000 r/min 离心15 min,收集上清液用于酶活性的测定。过氧化物酶(peroxidase,POD)活性的测定采用愈创木酚法[15]。超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活性的测定参照曹建康等[15]的方法。
1.4.7 菌落总数的测定
参照GB 4789.2—2022《食品安全国家标准食品微生物学检验菌落总数测定》[16]中的方法测定菌落总数。
1.4.8 腐烂率的测定
记录水蜜桃腐烂果实的个数(A),水蜜桃总个数记为B,用下列公式计算腐烂率(W,%)。
所有数据均平行测定3 次,数据采用平均值±标准差,使用SPSS 24.0 软件进行Duncan 多重比较(p<0.05为差异显著),并用Origin 2018 作图。
采后水蜜桃容易软化造成微生物侵染,引起腐烂变质。1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃菌落总数和腐烂率的影响见图1。
图1 1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃菌落总数和腐烂率的影响
Fig.1 Effect of combined treatment of 1-MCP and ClO2 on aerobic plate count and rot rate of peach
A.菌落总数;B.腐烂率。不同小写字母表示组间差异显著(p<0.05)。
如图1A 所示,菌落总数在整个贮藏期除在第4 天有所下降外整体呈上升趋势,其中CK 组的菌落总数始终高于各处理组(p<0.05)。在两个单独处理组中,ClO2 处理组菌落数在贮藏前中期(0~4 d)显著低于1-MCP 处理组,结合处理组的抑菌效果在整个贮藏期内均显著优于单独处理组(p<0.05)。到贮藏结束时,结合处理组的菌落总数为3.75 lg(CFU/g),分别比CK组、ClO2 处理组、1-MCP 处理组低16.15%、5.76% 和6.29%。腐败率的测定结果与菌落计数结果相符。由图1B 可知,CK 组从第4 天开始出现腐烂,单独处理组第6 天出现腐烂,且ClO2 处理组腐烂率显著低于1-MCP 处理组,而结合处理组到贮藏结束才出现腐烂,腐烂率显著低于单独处理组(p<0.05)。
ClO2 由于强氧化作用可有效破坏微生物胞内含巯基相关酶,抑制蛋白质合成途径进而导致微生物死亡[9],因此可有效减少桃表面致病菌,显著降低腐烂率。但在本试验中,1-MCP 处理后桃表面菌落总数也显著降低,在第6 天其抑菌效果甚至优于ClO2,腐败率也相应降低。这可能是因为1-MCP 可抑制乙烯释放,延缓了果实的软化和损伤,阻碍了微生物的侵染和繁殖。同时1-MCP 可诱导桃果实苯并烷类代谢途径抗病相关物质的积累,从而提高其抗病能力[17]。因此,1-MCP 结合ClO2 可分别从提高果实抗病性和抑制微生物蛋白质合成两方面抑制微生物对桃果实的侵染、降低腐败率,效果显著优于单独处理。在唐欣影[18]的研究中,ClO2 单独处理西蓝花腐败率为8.91%,ClO2 结合1-MCP 处理则使腐烂率降低至0%,进一步证实了两者的协同效果。
1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃呼吸强度、乙烯释放量和MDA 含量的影响见图2。
图2 1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃呼吸强度、乙烯释放量和MDA 含量的影响
Fig.2 Effect of combined treatment of 1-MCP and ClO2 on respiratory intensity,ethylene production,and MDA content of peach
A.呼吸强度;B.乙烯释放量;C.MDA 含量。不同小写字母表示组间差异显著(p<0.05)。
呼吸作用是采后重要的生理代谢,会使果实品质下降,加快衰老。由图2A 可知,在贮藏第2 天,各处理组的呼吸强度显著低于CK 组(p<0.05),此时各处理组间无显著差异。贮藏第4 天和第6 天,结合处理组显著低于两个单独处理组(p<0.05),CK 组呼吸强度最高。贮藏结束时,结合处理组的呼吸强度最低,为37.09 CO2 mg/(kg·h),ClO2和1-MCP 单独处理组显著低于CK 组(p<0.05),分别为CK 组的85.92%和72.39%。
乙烯可以加快果实的成熟衰老,增强呼吸作用,直接影响果实的贮藏品质。如图2B 所示,乙烯释放量除CK 组在贮藏结束时有所上升外在整个贮藏期整体呈先上升后下降的趋势。整个贮藏期,CK 组的乙烯释放量始终显著高于各处理组(p<0.05)。在贮藏第2 天和第4 天,各处理组间差异不显著。第4 天时,CK 组的乙烯释放量达到最大值,为11.06 μL/(kg·h),各处理组与CK 组相比分别降低了67.59%、63.44% 和69.07%。贮藏后期(6~8 d),ClO2 处理组和1-MCP 处理组的乙烯释放量开始显著高于结合处理组(p<0.05),但两组之间差异不显著。
1-MCP 可通过与乙烯受体结合阻断乙烯及其受体的正常结合,有效阻止乙烯的生成[5],进而抑制果实后熟相关的生理代谢,降低果实的呼吸强度。ClO2 则能阻止蛋氨酸降解生成乙烯,并且破坏已生成的乙烯,有效降低果实的乙烯释放量。在本试验中,1-MCP 和ClO2 均明显抑制了桃果实的乙烯释放、降低了呼吸强度。但在贮藏前期,将两者结合后其处理效果与单独处理没有显著差异,直到中后期时结合处理组对呼吸强度和乙烯释放的抑制作用才强于单独处理组。这可能是因为贮藏前期果实的CO2 和乙烯释放量相对较低,1-MCP 和ClO2 单独处理即可有效抑制其释放;而中后期由于果实衰老软化进程加快,呼吸和乙烯释放速率加快,结合处理从两个不同方面同时作用于乙烯,因而效果更明显。在张冬梅[19]的研究中也有类似结论:无花果果实贮藏到第5 天对照组的呼吸速率为169 CO2 mg/(kg·h),ClO2 处理组比对照组降低了10.65%,1-MCP 和ClO2 结合处理组比对照组降低了14.79%,推迟了呼吸高峰的出现。
MDA 是膜脂过氧化作用的主要产物之一,MDA积累越多,膜脂过氧化程度越高,越容易衰老。如图2C 所示,随贮藏时间的延长,水蜜桃果实的MDA 含量呈上升趋势。在整个贮藏期,CK 组MDA 含量始终显著高于各处理组(p<0.05),ClO2、1-MCP 和结合处理均能不同程度地抑制MDA 含量的升高。但在贮藏前期(0~2 d),各处理组之间没有显著差异。从第4 天开始,结合处理组的MDA 含量显著低于单独处理组(p<0.05),但两个单独处理组之间差异不显著。贮藏结束时,CK 组的MDA 含量达2.69 μmol/g,分别是ClO2、1-MCP 和结合处理组的1.25、1.24 倍和1.41 倍。这表明1-MCP 和ClO2 单独处理均能抑制MDA 含量的上升,结合处理抑制效果更明显。
采后果蔬衰老或受环境胁迫时,活性氧会大量积累,破坏细胞膜结构,增加MDA 的含量,加快膜脂过氧化,进而加快果实衰老[20]。在本试验中,1-MCP 处理显著抑制了MDA 含量的上升,这可能与1-MCP 可以保持较低的磷脂D 酶、脂酶和脂氧合酶等膜脂降解酶的活性,维持细胞膜的完整性相关[21]。ClO2 对MDA 的抑制作用则可能是因为ClO2 处理可以保持较低的细胞膜透性,维持较完整的膜结构[20]。两者结合对MDA含量的抑制作用得到了显著提升,尽管在贮藏前期因为活性氧含量较低,结合处理与单独处理组没有显著差异。冯叙桥等[22]在玫瑰香葡萄中的研究结果也表明,1-MCP 和ClO2 单独处理明显抑制MDA 含量的升高,结合处理后可进一步降低MDA 含量(5.86 μmol/g),证实了1-MCP 和ClO2 结合处理的协同效果。
2.3.1 不同处理对水蜜桃硬度的影响
1-MCP 结合ClO2处理对水蜜桃硬度的影响见图3。
图3 1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃硬度的影响
Fig.3 Effect of combined treatment of 1-MCP and ClO2 on firmness of peach
不同小写字母表示组间差异显著(p<0.05)。
硬度是反映果实保鲜效果的重要指标。水蜜桃在采后贮藏过程中,细胞壁结构发生改变,果实开始逐渐软化,硬度下降。从图3 中可以看出,所有处理组硬度随贮藏时间的延长而下降,其中,CK 组的硬度下降速率最快。在贮藏第2 天,结合处理组的硬度显著高于其他处理组(p<0.05),ClO2 处理组与CK 组无显著差异。到贮藏第4 天,1-MCP 处理组以及结合处理组硬度较高(两组间无显著差异),ClO2 处理组次之,CK 组最低。贮藏后期(6~8 d),ClO2 处理组硬度与CK 组水平相当,但显著低于1-MCP 处理组和结合处理组(且两组之间无显著差异)。
水蜜桃在采后贮藏过程中,果实逐渐变软硬度下降,造成果实软化的原因主要有内源乙烯含量的增加以及细胞壁果胶物质发生水解[23]。而且病原微生物可以通过释放果胶裂解酶降解细胞壁入侵机体,大量释放果胶裂解酶会加速果实的软化[24]。有研究表明,1-MCP 处理可以通过抑制多聚半乳糖醛酸酶(polygalacturonase,PG)的活性减少果胶降解,进而保持桃果实硬度[23],本试验结果也显示1-MCP 处理能显著抑制硬度下降。第4 天时,ClO2 处理组硬度显著高于CK组,一方面可能是因为ClO2 处理能够抑制细胞壁水解酶PG 和纤维素酶(cellulase,Cx)的活性,进而延缓果实软化的速度[25];另一方面可能是ClO2 处理后可以抑制微生物的滋生,减少果胶裂解酶的释放。但与1-MCP 结合后的处理效果与单独1-MCP 处理相比没有显著差异,说明ClO2 处理在维持果实硬度上与1-MCP相比作用微弱。
2.3.2 不同处理对水蜜桃果实可溶性固形物和可滴定酸含量的影响
1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃可溶性固形物和可滴定酸含量影响见图4。
图4 1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃可溶性固形物和可滴定酸含量的影响
Fig.4 Effect of combined treatment of 1-MCP and ClO2 on total soluble solid and titratable acid contents of peach
A.可溶性固形物含量;B.可滴定酸含量。不同小写字母表示组间差异显著(p<0.05)。
可溶性固形物主要包括糖和酸等可溶性物质,直接影响果实的口感,是判断果实贮藏品质的重要指标。由图4A 可知,所有处理组的可溶性固形物含量呈先上升后下降的趋势,在第4 天达到最高值。在贮藏第2、4 天,结合处理组的可溶性固形物含量与单独处理组无显著差异,但显著高于CK 组(p<0.05);ClO2 处理组的可溶性固形物含量与CK 组无显著差异。在贮藏第6 天,各处理组间无明显差异,但均显著高于CK 组(p<0.05)。贮藏结束(8 d)时,各处理组的可溶性固形物含量均显著高于CK 组,1-MCP 处理组显著高于ClO2 处理组(p<0.05),但与结合处理组无显著差异。
由图4B 可知,与可溶性固形物含量变化趋势类似,在贮藏过程中各组水蜜桃果实的可滴定酸含量先上升后下降,CK 组在整个贮藏期可滴定酸含量均显著低于各处理组(p<0.05)。除第4、6 天1-MCP 与ClO2处理组有差异显著外,在其他时间点无显著差异。结合处理组可滴定酸含量在整个贮藏期均显著高于其他处理组(p<0.05)。至贮藏结束时,其数值为17.42%,是对照组的1.53 倍。
可溶性固形物和可滴定酸含量在贮藏前期呈上升趋势,可能是因为果实的后熟作用;后期由于呼吸作用和生理代谢,营养物质消耗加快,导致含量降低[26]。在本试验中,ClO2 处理能延缓营养物质含量的下降,主要是因为ClO2 能够降低果实的呼吸强度,进而减少营养物质的消耗。1-MCP 处理也是通过抑制果实的呼吸强度来降低营养物质下降的速率。结合处理的效果与预期一致,显著优于单独处理。在吴凡等[27]的研究中,贮藏结束时,1-MCP 处理后樱桃的可滴定酸含量下降19.26%,结合处理组仅下降14.08%,表明复合处理的效果更显著[26],结果与本试验的效果类似。
2.3.3 不同处理对水蜜桃果实维生素C、总酚和类黄酮含量的影响
1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃维生素C、总酚和类黄酮含量的影响见图5。
图5 1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃维生素C、总酚和类黄酮含量的影响
Fig.5 Effect of combined treatment of 1-MCP and ClO2 on vitamin C,total phenols,and flavonoid contents of peach
A.维生素C 含量;B.总酚含量;C.类黄酮含量。不同小写字母表示组间差异显著(p<0.05)。
维生素C 是桃果实中重要的营养物质。由图5A可知,在贮藏期间,水蜜桃果实维生素C 含量整体呈先上升后下降的趋势,除1-MCP 处理组在第4 天达到最高值外,其他处理组均在第6 天达到最高值随后下降。在贮藏第2 天,结合处理组的维生素C 含量显著高于ClO2 处理组和CK 组(p<0.05),但与1-MCP 处理组差异不显著。到第4 天后,结合处理组的维生素C含量始终显著高于其他处理组。在第6 天,ClO2 处理组的维生素C 含量显著高于CK 组(p<0.05),与1-MCP 处理组差异不显著。贮藏结束时,1-MCP 处理组维生素C 含量显著高于ClO2处理组和CK 组(p<0.05)。
酚类化合物是重要的次生代谢产物,反映抗氧化能力的强弱[7]。由图5B 可知,贮藏初期,总酚含量随贮藏时间延长降低,但在贮藏后期,总酚含量有所上升。贮藏第4 天时,CK 组的总酚含量与ClO2 处理组无显著差异,结合处理组与1-MCP 处理组也无显著差异,但在其他时间点CK 组和结合处理组始终保持最低和最高值。在第4 天时,1-MCP 处理组相对ClO2 处理组总酚含量较高,第6 天反之,但在贮藏的第2、8 天两组之间差异不显著。
如图5C 所示,各处理组的类黄酮含量呈不同的变化趋势。在贮藏第2 天,结合处理组的类黄酮含量显著高于ClO2 处理组(p<0.05),但与1-MCP 处理组差异不显著。第4 天以后,结合处理组的类黄酮含量显著高于单独处理组;在两单独处理组中,ClO2 处理组的类黄酮含量显著高于1-MCP 处理组(p<0.05)。除第8 天CK 组类黄酮含量与1-MCP 处理组组差异不显著外,其他贮藏点均显著低于各处理组(p<0.05)。
抗坏血酸、总酚和黄酮是重要的活性成分,可以清除活性氧的伤害,提高果实的抗氧化能力。试验结果表明,1-MCP 和ClO2 处理均可以保持抗氧化物质的含量,可能是因为1-MCP 和ClO2 都可以降低果实的呼吸强度和乙烯生成,延缓果实的成熟衰老,从而减少抗氧化成分的氧化分解和消除活性氧的消耗。而相比于单独处理,结合处理能更有效地延缓果实成熟,保持更高的抗氧化物质含量。在金童[26]的研究中,也有类似的结果:在整个贮藏期,结合处理组冬枣的维生素C 含量始终处于最高水平,贮藏结束时含量达206 mg/100 g,高于ClO2 处理组28.75%。另外,在个别处理组中总酚和类黄酮含量在贮藏后期有所上升,可能与贮藏后期果实衰老诱发次生代谢产物合成抵御胁迫有关[28]。
2.4.1 不同处理对水蜜桃果实抗氧化酶活性的影响
1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃POD 和SOD 活性的影响见图6。
图6 1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃POD 和SOD 活性的影响
Fig.6 Effect of combined treatment of 1-MCP and ClO2 on POD and SOD activities of peach
A.POD 活性;B.SOD 活性。不同小写字母表示组间差异显著(p<0.05)。
POD 可以将H2O2 分解成H2O 和O2,使机体免受H2O2 的伤害。由图6A 可知,在整个贮藏期,单独处理组和CK 组POD 活性呈先下降后上升的趋势,结合处理组在第2 天先上升随后再下降。在整个贮藏期,除第6 天外,结合处理组的POD 活性均显著高于单独处理组(p<0.05)。在贮藏第2~4 天,单独处理组的POD活性无显著差异,到贮藏后期(6~8 d),1-MCP 处理组显著高于ClO2 处理组(p<0.05)。CK 组的POD 活性除在第4 天与单独处理组无差异外,其他时间均显著低于处理组(p<0.05)。
SOD 是一种含金属辅基的酶,具体作用是将O2-分解成H2O2 和O2,进而清除超氧阴离子对果实的伤害。从图6B 中可以看出,SOD 活性在第2 天有所下降随后不断增强。在贮藏第2 天,结合处理组的SOD 活性显著高于1-MCP 处理组(p<0.05),但与ClO2 处理组无显著差异。在贮藏4~6 d,结合处理组的SOD 活性显著高于单独处理组(p<0.05),ClO2 处理组的POD 活性与CK 组差异不显著。在贮藏第8 天,CK 组的SOD 活性显著低于各处理组,单独ClO2 或1-MCP 处理组SOD活性显著低于结合处理组(p<0.05),但两者之间差异不显著。此时结合处理组的SOD 活性达到最高值0.45 U/g,分别是CK 组、ClO2处理组和1-MCP 处理组的1.17、1.23、1.61 倍。上述结果表明,ClO2和1-MCP 处理均能提高抗氧化酶活性,而结合处理的效果更明显。
活性氧的清除通过植物的酶促和非酶促系统完成,酶促系统主要包括POD 和SOD 等抗氧化酶。在本试验中,1-MCP 及ClO2 处理均提高了果实的POD和SOD 活性,但结合处理较两者单独处理能更好地维持酶活性,因此推测可能是处理后降低了细胞膜脂的过氧化程度,减少了对细胞的伤害,进而提高抗氧化酶的活性。在贮藏第2 天,ClO2 处理组和结合处理组的SOD 活性无显著性差异,可能是在前期活性氧含量低,单独处理即可清除活性氧,避免氧化损伤,随着贮藏时间的延长,活性氧含量不断增加,此时1-MCP 和ClO2处理同时发挥作用,明显提高了抗氧化酶的活性,进而延缓果实衰老。
2.4.2 不同处理对水蜜桃果实自由基清除率的影响
1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃DPPH 自由基和羟基自由基清除率的影响见图7。
图7 1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃DPPH 自由基清除率和羟基自由基清除率的影响
Fig.7 Effect of combined treatment of 1-MCP and ClO2 on DPPH and OH free radical scavenging rates of peach
A.DPPH 自由基清除率;B.羟基自由基清除率。不同小写字母表示组间差异显著(p<0.05)。
DPPH 自由基和羟基自由基清除率是衡量果蔬抗氧化能力的重要指标。由图7A 可知,在整个贮藏期,CK 组的DPPH 自由基清除率均显著低于各处理组(p<0.05)。在贮藏第2 天,ClO2 处理组的DPPH 自由基清除率显著低于结合处理组(p<0.05),但结合处理组与1-MCP 处理组差异不显著。第4 天后,结合处理组的DPPH 自由基清除率显著高于单独处理组(p<0.05),两单独处理组间差异不显著。在贮藏第8 天,结合处理组DPPH 清除率为93.3%,与CK 组相比,提高了14.7%。
从图7B 中可以看出,随着贮藏时间的延长,羟基自由基清除率整体呈先下降后上升的趋势。在贮藏前中期(2~4 d),CK 组和1-MCP 处理组无明显差异。到贮藏后期(6~8 d),CK 组的羟基自由基清除率显著低于各处理组(p<0.05)。在整个贮藏期,除第4 天,结合处理组的羟基自由基清除率均显著高于其他处理组(p<0.05)。在贮藏第2、6 天,ClO2 处理组的羟基自由基清除率显著高于1-MCP 处理组(p<0.05),第4 天与1-MCP处理组差异不显著。在贮藏结束时,1-MCP 处理组的羟基自由基清除率显著高于ClO2 处理组(p<0.05)。
果蔬成熟衰老过程中伴随着活性氧的大量积累,活性氧的积累会对果实造成伤害。本试验结果表明,1-MCP 和ClO2 处理均能提高桃果实的自由基清除能力,可能是因为1-MCP 和ClO2 处理既能够保持较高的抗坏血酸和总酚等非酶抗氧化剂含量又能使SOD 和POD 等抗氧化酶活性处于较高水平,进而增强对自由基的清除能力。在李奕星等[29]的研究中也得到了相似的结论:结合处理可以通过提高荔枝果皮的多酚含量,进而提高DPPH 自由基清除能力,贮藏结束时,结合处理组的DPPH 自由基清除率为88%,与贮藏开始时的清除率相当。
1-MCP 结合ClO2 处理对水蜜桃品质变化的主成分分析见图8。
图8 1-MCP 结合ClO2 处理水蜜桃品质变化的主成分分析
Fig.8 Principal component analysis of quality change of peach treated with both 1-MCP and ClO2
通过对贮藏结束时的15 项指标进行主成分分析,将所有指标转化成2 个主成分。如图8 所示,两个主成分的累积贡献率为92.2%,其中主成分因子1(principal component 1,PC1)和主成分因子2(principal component 2,PC2)分别贡献了总方差的62.7% 和29.5%。各组的样点逐渐从PC1 组分向左移动,远离0 d 的新鲜样品,表明水蜜桃随贮藏时间的延长品质不断下降。结合处理组的样点离0 d 最近,单独处理介于结合处理组和CK 组之间,CK 组的样点离0 d 最远。PCA 结果直观表明,1-MCP 或ClO2 单独处理均能保持果实的品质,1-MCP 结合ClO2 处理进一步提高保鲜效果。
1-MCP 和ClO2 处理的水蜜桃贮藏品质与CK 组相比有了明显提高,ClO2 和1-MCP 都能够有效抑制微生物的滋生,降低果实的腐烂率。1-MCP 处理能够有效延缓果实的软化,ClO2 处理对延缓果实的软化效果弱于1-MCP 处理。1-MCP 和ClO2 处理均能不同程度降低果实的呼吸强度,抑制乙烯的生成和MDA 含量的上升,对可溶性固形物和可滴定酸含量的维持起到积极作用。1-MCP 结合ClO2处理同时具有两者的优点,更进一步地保持果实的品质。此外,1-MCP 和ClO2 处理均能维持较高的抗氧化物质含量和抗氧化酶活,有效地清除自由基,结合处理后效果进一步提升。综上,1-MCP 和ClO2结合处理可针对桃采后贮藏中突出的呼吸旺盛和易腐烂问题,明显提升水蜜桃的贮藏保鲜品质。
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