薄荷醇又称薄荷脑，是一种无色针状结晶或粒状的有机化合物，在自然界中存有两种异构体，其中左旋薄荷醇（L-薄荷醇）具有清新的薄荷香气和强烈的清凉感，因此L-薄荷醇被广泛应用于食品、烟草和化妆品等各种领域[1-2]。L-薄荷醇不仅可以作为香料使用，同时也是一种重要的医药原料[3-4]。在食品行业中，它常被用作口香糖、糖果、饮料和糕点的添加剂，为产品带来清凉的口感和独特的香气[5]。在烟草行业中，添加薄荷醇可以增加烟草的清新感和口感[6]。L-薄荷醇虽香气浓烈但易挥发，高温条件下损失大，还易结晶降解，严重影响了其在食品和烟草中的应用，导致产品质量和货架寿命降低。
微胶囊包埋使用特殊材料包埋目标物质，保持其风味、营养和活性，增强稳定性，广泛应用于食品、化工、医药等领域[7-9]。有研究采用明胶与阿拉伯树胶粉、明胶与海藻酸钠等材料作为壁材，通过复合凝聚法制备薄荷精油微胶囊，并对其物理性能和贮存稳定性进行表征，丰富了微胶囊制备材料的多样性，并为微胶囊的稳定性研究提供了参考[10-14]。此外，研究人员选用辛烯基琥珀酸酐改性的短葡聚糖链、改性麦芽糊精、阿拉伯胶和β-环糊精分别通过分子包络法、喷雾干燥等技术制备了薄荷醇微胶囊，使薄荷醇的包埋率由70% 提高至95%，拓展了制备微胶囊技术[15-18]。还有研究人员优化固化剂，使用高压静电法、熔体分散等方法延长微胶囊的保质期[19-21]。目前多数L-薄荷醇微胶囊属于常规型，无法使L-薄荷醇在较为特定的温度下释放，因此对温敏型L-薄荷醇微胶囊研究较少。
单硬脂酸甘油酯（glyceryl monostearate，GMS）是一种常见的食品乳化剂和食品添加剂，其在65 ℃左右时会发生熔融现象[22]，所以当外部环境到达65 ℃以上时，GMS 融化，以GMS 为壁材的微胶囊芯材可以暴露出来进行释放。但通过预试验发现用GMS 作为壁材，L-薄荷醇在微胶囊中的包封率非常差，微胶囊形态易坍塌分解。辛烯基琥珀酸淀粉钠（sodium starch octenyl succinate，SSO）是一种安全性高的乳化增稠剂，还是优越的微胶囊璧材，可用来包埋水不溶性和挥发性物质[23]。因此GMS 和SSO 可作为温敏型微胶囊的壁材，SSO 可强化囊壁的机械强度，确保GMS 受热融化后，可继续保持微胶囊的原形态，以此达到芯材在特定温度下缓慢释放的效果。
基于此，本研究以L-薄荷醇为芯材，GMS 与SSO复配作为壁材，利用冷冻喷雾干燥制备温敏型L-薄荷醇微胶囊，采用单因素试验与响应面优化试验考察固形物含量、GMS 与SSO 质量比、芯材与壁材质量比、冷冻喷雾干燥温度等因素对微胶囊包埋率和得率的影响，探究最佳温敏型L-薄荷醇微胶囊化的制备工艺；使用扫描电子显微镜、激光粒度仪、热重分析仪和傅里叶红外光谱仪等设备对该微胶囊的形貌特征进行表征，并对温敏型L-薄荷醇微胶囊释放效率进行探究，以期为温敏型L-薄荷醇微胶囊的工业化及应用提供基础理论和技术支撑。
1 材料与方法
1.1 试剂与材料
L-薄荷醇（食品级）：江西源上草香料有限公司；SSO（食品级）：德清三富食品有限公司；GMS（食品级）：广州市佳力士食品有限公司；去离子水：杭州娃哈哈集团有限公司；甲醇、无水乙醇（均为分析纯）：国药集团化学试剂有限公司。
1.2 仪器与设备
C-MAG HP4 电热板：艾卡（广州）仪器设备有限公司；DP-HH-S8 数显恒温水浴锅：北京亚欧德鹏科技有限公司；SB-4200DTD 数控超声波清洗器：宁波新芝生物科技股份有限公司；OS25 高速分散机：广州华侨仪器科技有限公司；GJJ 实验型高压均质机：合肥小牛轻工机械有限公司；QFN 小型喷雾冷冻干燥机：上海乔枫实业有限公司；7890B/5977A 气相-质谱联用（gas chromatography-mass spectrometry，GC-MS）仪：美国安捷伦公司；G500 场发射扫描电子显微镜：德国蔡司公司；Mastersizer2000 激光粒径仪：英国马尔文帕纳科公司；TGA-1 热重分析仪：瑞士梅特勒-托利多公司。
1.3 L-薄荷醇微胶囊的制备方法
温敏型L-薄荷醇微胶囊：SSO 与去离子水按照一定的比例充分搅拌，水合8 h 后，得到透明、低黏的SSO 水合溶液，然后在90 ℃水浴锅中加热搅拌糊化1.5 h；GMS 与无水乙醇按一定比例充分混合，使其完全溶于无水乙醇；称取一定量的L-薄荷醇于60 ℃水浴加热搅拌，充分融化；将熔融的L-薄荷醇、溶解的GMS分别按一定比例加入到糊化的SSO 水相中，使用高速分散机（转速为8 000 r/min）搅拌30 min，得到混合液。然后将混合液在均质机按一定压力处理3 个循环，得到乳化液。将乳化液通过喷雾冷冻干燥机得到温敏型L-薄荷醇微胶囊。
常规型L-薄荷醇微胶囊：制备方法与制备温敏型L-薄荷醇微胶囊相同，但不使用GMS 作为壁材。
1.4 L-薄荷醇微胶囊包埋率检测
1.4.1 L-薄荷醇的检测
使用甲醇溶解L-薄荷醇标准品，定容在10 mL 的棕色容量瓶中，然后稀释得到浓度为0.05、0.1、0.5、1、5、10、50 mg/mL 的标准L-薄荷醇溶液，置于4 ℃冷藏保存备用，待GC-MS 分析。GC-MS 分析方法参考文献[4]并稍作修改。GC-MS 由气相色谱7890B 和质谱检测器5977A 组成。样品分离色谱柱为VF-WAXms 色谱柱（30 m×0.25 nm×0.25 μm）；进样体积1 μL。气体为氦气，载气流速为1 mL/min，进样口温度为280 ℃，传输线温度为280 ℃。离子源温度为230 ℃，单离子检测扫描（single ion monitoring，SIM）模式，m/z 81。色谱柱在110 ℃保持5 min，然后以10 ℃/min 升温至170 ℃，保持5 min 再以15 ℃/min 升温至250 ℃保持6 min。
以L-薄荷醇标准品浓度为横坐标，检测结果峰面积为纵坐标绘制标准曲线，其线性回归方程为y=12.88x-15.33，线性相关系数r2=0.999 5，结果选定范围内线性关系良好，方法检出限为0.011 mg/L，定量限为0.036 mg/L。
1.4.2 包埋率和得率测定
取1 g L-薄荷醇微胶囊，加入5 mL 无水乙醇进行混合，3 000 r/min 离心2 min，使用15 mL 无水乙醇重复冲洗，合并滤液通过低温旋转蒸发，将其定容于5 mL的容量瓶中，测定L-薄荷醇在微胶囊外面的含量。L-薄荷醇包埋率的计算公式（1）如下。
式中：E 为L-薄荷醇微胶囊包埋率，%；X 为L-薄荷醇微胶囊质量，g；X1 为L-薄荷醇微胶囊表面含油量，g。
利用质量称量法测定得率，计算公式（2）如下。
式中：M 为L-薄荷醇微胶囊的得率，%；M0 为喷雾干燥后微胶囊质量，g；M1 为L-薄荷醇质量，g；M2 为壁材质量，g。
1.5 L-薄荷醇微胶囊工艺优化
1.5.1 单因素试验
1.5.1.1 固形物含量对微胶囊的影响
在GMS 与SSO 质量比0.15、芯材与壁材质量比0.20、均质压力30 MPa、进料速率20 mL/min 和干燥温度40 ℃的条件下，研究GMS、SSO 混合固形物含量分别为15%、20%、25%、30%、35%时对L-薄荷醇微胶囊包埋率和得率的影响。
1.5.1.2 GMS 与SSO 质量比对微胶囊的影响
在固形物含量25%、芯材与壁材质量比0.20、均质压力30 MPa、进料速率20 mL/min 和干燥温度40 ℃的条件下，研究GMS 与SSO 质量比分别为0.05、0.10、0.15、0.20、0.25 时对L-薄荷醇微胶囊包埋率和得率的影响。
1.5.1.3 芯材与壁材质量比对微胶囊的影响
在固形物含量25%、GMS 与SSO 质量比0.15、均质压力30 MPa、进料速率20 mL/min 和干燥温度40 ℃的条件下，研究芯材与壁材质量比为0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35 时对L-薄荷醇微胶囊包埋率和得率的影响。
1.5.1.4 均质压力对微胶囊的影响
在固形物含量25%、GMS 与SSO 质量比0.15、芯材与壁材质量比0.20、进料速率20 mL/min 和干燥温度40 ℃的条件下，研究均质压力为20、25、30、35、40 MPa时对L-薄荷醇微胶囊包埋率和得率的影响。
1.5.1.5 进料速率对微胶囊的影响
在固形物含量25%、GMS 与SSO 质量比0.15、芯材与壁材质量比0.20、均质压力30 MPa 和干燥温度40 ℃的条件下，研究进料速率分别为10%、15%、20%、25%、30%时对L-薄荷醇微胶囊包埋率和得率的影响。
1.5.1.6 干燥温度对微胶囊的影响
在固形物含量25%、GMS 与SSO 质量比0.15、芯材与壁材质量比0.20、均质压力30 MPa 和进料速率20 mL/min 的条件下，研究干燥温度分别为30、35、40、45、50、55 ℃时对L-薄荷醇微胶囊包埋率和得率的影响。
1.5.2 响应面试验
在单因素试验结果的基础上，选取固形物含量、GMS 与SSO 质量比、芯材与壁材质量比、干燥温度4 个因素，利用Design-Expert 13 进行四因素三水平响应面设计，以包埋率为考察指标，优化温敏型L-薄荷醇微胶囊制备工艺条件。响应面因素与水平见表1。
表1 响应面因素与水平
Table 1 Factors and levels of response surface
因素水平-1 0 1 A 固形物含量/%20 25 30 B GMS 与SSO质量比0.05 0.10 0.15 C 芯材与壁材质量比0.15 0.20 0.25 D 干燥温度/℃35 40 45
1.6 微胶囊结构表征
1.6.1 扫描电子显微镜分析
将制备好的L-薄荷醇微胶囊均匀分散在导电胶上，喷金后用场发射扫描电子显微镜观察形貌，加速电压为3 kV。
1.6.2 微胶囊粒径分析
将适量L-薄荷醇微胶囊分散于去离子水中，溶液透明即可用激光粒径仪进行分析。
1.6.3 微胶囊热重分析
取适量L-薄荷醇、温敏型L-薄荷醇微胶囊和常规型L-薄荷醇微胶囊样品，将其分别置于热重分析仪进行测定。在氮气气氛下，样品温度从40 ℃升到900 ℃（速度为10 ℃/min）。
1.7 微胶囊释放性能测定
将一定量的温敏型L-薄荷醇微胶囊和常规型L-薄荷醇微胶囊分别至于75 ℃条件下，加热5、10、15、20、25、30、35、40 s，快速将加热后微胶囊颗粒置于适量的低温甲醇中研磨，然后定容，待GC-MS 分析，仪器分析方法同1.4.1。
1.8 数据分析
试验所得数据以平均值±标准差表示，其相关数据通过方差分析和邓肯测试，采用WPS office 对数据进行处理，OriginPro 2016 为作图软件，Design-Expert 13设计与分析响应面试验结果。
2 结果与分析
2.1 单因素试验结果分析
2.1.1 固形物含量对微胶囊的影响结果分析
固形物含量对微胶囊的影响见图1。
图1 固形物含量对微胶囊的影响
Fig.1 Effect of solid content on microcapsules
同一指标不同小写字母表示差异显著（P＜0.05）。
由图1 可知，固形物含量对温敏型L-薄荷醇微胶囊的包埋率和得率均有影响。随着固形物含量的增加，微胶囊包埋率逐渐增加，当固形物含量高于25%时，微胶囊包埋率增加效果不显著，主要原因是固形物含量较低时，喷雾冷冻干燥过度，易使微胶囊干裂，导致包埋率低。随着固形物含量变化，微胶囊得率的变化不显著。此外，如果固形物含量超过30%，其将会对料液的雾化产生影响，造成微胶囊黏壁，使得率降低。因此选择固形物含量20%、25%、30%进行响应面优化试验。
2.1.2 GMS 与SSO 质量比对微胶囊的影响结果分析
GMS 与SSO 质量比对微胶囊的影响见图2。
图2 GMS 与SSO 质量比对微胶囊的影响
Fig.2 Effect of GMS/SSO mass ratio on microcapsules
同一指标不同小写字母表示差异显著（P＜0.05）。
由图2 可知，GMS 与SSO 质量比对温敏型L-薄荷醇微胶囊的包埋率和得率均有影响。随着GMS 占比的增加，L-薄荷醇微胶囊包埋率逐渐降低，GMS 与SSO质量比超过0.10 时，包埋率显著降低；当GMS 与SSO质量比大于0.15 时，L-薄荷醇微胶囊得率显著降低。主要原因是GMS 的增加使微胶囊自身结构的稳定性变差，囊壁易坍塌分解。因此选择GMS 与SSO 质量比0.05、0.10、0.15 进行响应面优化试验。
2.1.3 芯材与壁材质量比对微胶囊的影响结果分析
芯材与壁材质量比对微胶囊的影响见图3。
图3 芯材与壁材质量比对微胶囊的影响
Fig.3 Effect of core material/wall material mass ratio on microcapsules
同一指标不同小写字母表示差异显著（P＜0.05）。
由图3 可知，随着芯材占比增大，微胶囊的包埋率先增大后减小，芯材与壁材质量比为0.20 时，包埋率达90.33%；当芯材和壁材质量比大于0.25 时，微胶囊的得率显著降低。微胶囊的包埋率和得率降低的原因均是过多的L-薄荷醇不能被完全包埋导致。因此选择芯材与壁材质量比0.15、0.20、0.25 进行响应面优化试验。
2.1.4 均质压力对微胶囊的影响结果分析
均质压力对微胶囊的影响见图4。
图4 均质压力对微胶囊的影响
Fig.4 Effect of homogenization pressure on microcapsules
同一指标不同小写字母表示差异显著（P＜0.05）。
由图4 可知，随着均质压力增大，微胶囊的包埋率和得率均增加，但是在30～40 MPa 间，微胶囊的包埋率和得率均不再显著增加，这表明此均质压力范围形成的乳滴更易形成L-薄荷醇微胶囊。如果均质压力继续增加，乳液的液滴会变得更小容易破碎，反而会使微胶囊的包埋率和得率降低。因此选择均质压力30 MPa进行微胶囊制备。
2.1.5 进料速率对微胶囊的影响结果分析
进料速率对微胶囊的影响见图5。
图5 进料速率对微胶囊的影响
Fig.5 Effect of feed rate on microcapsules
同一指标不同小写字母表示差异显著（P＜0.05）。
由图5 可知，进料速率为10～20 mL/min 时，微胶囊的包埋率随着进料速率的增加而增加，但当进料速率继续增加，包埋率开始降低，主要原因是进料速率增大造成雾化滴粒径随之增大，使小部分的微胶囊不能形成紧密囊壁，造成包埋率降低；在进料速率为10～25 mL/min 时，微胶囊得率变化不显著，当进料速率大于25 mL/min，包埋率显著降低，其产生原因是料液雾化不充分，未能形成微胶囊。因此选择进料速率15 mL/min 进行微胶囊制备。
2.1.6 干燥温度对微胶囊的影响结果分析
干燥温度对微胶囊的影响见图6。
图6 干燥温度对微胶囊的影响
Fig.6 Effect of drying temperature on microcapsules
同一指标不同小写字母表示差异显著（P＜0.05）。
由图6 可知，与其他干燥温度相比，当干燥温度为55 ℃时，微胶囊的包埋率显著降低，主要原因是该温度恰为芯材L-薄荷醇的熔点附近，易使其发生融化，导致微胶囊的包埋率降低；干燥温度为35～50 ℃时，微胶囊的得率无显著增加。因此选择干燥温度35、40、45 ℃进行响应面优化试验。
2.2 响应面结果分析
2.2.1 响应面方案与结果
以微胶囊的包埋率为响应值，利用Box-Behnken中心组合进行试验设计，结果如表2 所示。
表2 微胶囊包埋率Box-Behnken 试验设计与结果
Table 2 Box-Behnken experiment design and results for embedding rate of microcapsules
序号C 芯材与壁材质量比D 干燥温度1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 A 固形物含量0-1 B GMS 与SSO质量比0-1 1 1-0 0 1-0 0 1-11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 1 0 0 1 0 0 0 0 1-1 0 0 0 0 0 1-0 0 0 0 0 1 1 1 0 1-1 0 0-1 1 0 0 0 0 0 1 0-1 1 0 0 0--1 1 0 0 1 0-1 1 0 0 0--1-1 1 0 0 0 0 1 0 1-1 0 1 1 0 0-1 1 0 0 0 0-1 0 0 0 1 0 1 1-1 0-0 0 0 0 0 0 1-1-1 1 0 1 0 1 0-1 0 0包埋率/%90.23 79.99 86.39 84.93 90.54 78.01 89.91 88.22 87.19 85.21 76.49 93.19 83.18 91.89 76.29 74.49 84.35 74.44 83.39 92.11 84.51 77.19 88.82 91.12 88.07 78.42 75.43 78.61 90.16
利用Design-Expert 软件进行二次多项回归模型分析，回归方程如下。
回归模型方差分析见表3。
表3 回归模型方差分析
Table 3 Analysis of variance of the regression models
注：**表示影响极显著（P＜0.01）。
方差来源模型自由度14 A B C D AB显著性********AC AD BC BD CD A²B²C²D²残差失拟项净误差总离差平方和980.68 39.20 174.04 13.31 277.34 8.94 12.64 1.28 10.02 35.70 0.81 2.39 265.57 86.23 171.36 42.27 21.38 20.88 1 022.95 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 14 F 值23.20 12.99 57.65 4.41 91.87 2.96 4.19 0.42 3.32 11.83 0.27 0.79 87.97 28.56 56.76 P 值＜0.000 1 0.002 9＜0.000 1 0.054 3＜0.000 1 0.107 3 0.060 0 0.526 0 0.090 0 0.004 0 0.612 6 0.388 4＜0.000 1 0.000 1＜0.000 1********10 4 28均差70.05 39.20 174.04 13.31 277.34 8.94 12.64 1.28 10.02 35.70 0.81 2.39 265.57 86.23 171.36 3.02 2.14 5.22 0.409 6 0.885 0
由表3 可知，模型P＜0.01，表示该模型影响极显著，模型具有统计学意义，失拟项P=0.885 0＞0.05，结果差异不显著，表明该模型无失拟因素存在，可以使用该回归方程代替试验真实点对试验结果进行分析。模型中的相关系数R2=0.957 8、校正决定系数R2Adj=0.917 4，说明实际值与预测值间具有较好重合度，该模型可靠，可用于温敏型L-薄荷醇微胶囊制备工艺预测与分析。从各个因素的F 值判断，对微胶囊包埋率的影响程度为干燥温度（D）＞GMS 与SSO 质量比（B）＞固形物含量（A）＞芯材与壁材质量比（C）。
各因素间的交互作用对温敏型L-薄荷醇微胶囊包埋率影响的响应面和等高线如图7～12 所示。
图7 固形物含量和GMS 与SSO 质量比的交互作用
Fig.7 Interaction between solid content and GMS/SSO mass ratio
图8 固形物含量和芯材与壁材质量比的交互作用
Fig.8 Interaction between solid content and core material/wall material mass ratio
图9 固形物含量和干燥温度的交互作用
Fig.9 Interaction between solid content and drying temperature
图10 GMS 与SSO 质量比和芯材与壁材质量比的交互作用
Fig.10 Interaction between GMS/SSO mass ratio and core material/wall material mass ratio
图11 GMS 与SSO 质量比和干燥温度的交互作用
Fig.11 Interaction between GMS/SSO mass ratio and drying temperature
图12 芯材与壁材质量比和干燥温度的交互作用
Fig.12 Interaction between core material/wall material mass ratio and drying temperature
响应曲面的倾斜程度越高则代表交互作用的两因素对微胶囊包埋率因素影响越显著，GMS 与SSO 质量比（B）与干燥温度（D）等高线较扁平，交互作用极显著；固形物含量（A）和GMS 与SSO 质量比（B）、固形物含量（A）与芯材与壁材质量比（C）、固形物含量（A）与干燥温度（D）、GMS 与SSO 质量比（B）与芯材与壁材质量比（C）以及芯材与壁材质量比（C）与干燥温度（D）之间的交互作用响应面图较平缓，对包埋率的交互作用影响不显著，这与方差分析结果一致。
2.2.2 工艺条件确定及验证
根据响应面法试验得出的最优制备温敏型L-薄荷醇微胶囊的条件为固形物含量20.55%、GMS 与SSO质量比0.163、芯材与壁材质量比0.185、干燥温度41.9 ℃，此时包埋率为94.66%。根据实际试验条件，并结合试验和仪器实际参数，使用固形物含量21%、GMS 与SSO 质量比0.16、芯材与壁材质量比0.19、干燥温度42 ℃，在此条件下进行试验，最终包埋率为91.89%，结果的试验值与预测值拟合度较好，表明该模型稳定可靠。
2.3 微胶囊的扫描电子显微镜分析
在优化的条件下制备温敏型L-薄荷醇微胶囊，其扫描电子显微镜扫描结果如图13 所示。
图13 温敏型L-薄荷醇微胶囊扫描电子显微镜图
Fig.13 SEM image of thermo-sensitive L-menthol microcapsules
A.放大1 000 倍；B.放大5 000 倍。
由图13 可知，在放大1 000 倍和5 000 倍的条件下可以清晰地观察到L-薄荷醇微胶囊微观整体结构完整、呈规则的圆球形，且无黏连、颗粒分散性好，微胶囊表面略有褶皱，这可能是在干燥过程中失水导致。
2.4 微胶囊的粒径分析
对温敏型L-薄荷醇微胶囊进行粒径分析，结果如图14 所示。
图14 温敏型L-薄荷醇微胶囊粒径分布
Fig.14 Particle size distribution of thermo-sensitive L-menthol microcapsules
由图14 可知，经过优化工艺制备的微胶囊粒径分布比较集中，主要分布在1.0～4.8 μm，平均粒径为1.9 μm，说明该微胶囊具有良好品质。
2.5 热重分析
对L-薄荷醇、温敏型L-薄荷醇微胶囊和常规型L-薄荷醇微胶囊进行热重分析，结果如图15 所示。
图15 微胶囊的热重曲线
Fig.15 Thermogravimetric curves of microcapsules
由图15 可知，L-薄荷醇在40～170 ℃质量快速损失，170 ℃时，质量分数仅为3.05%，主要原因是L-薄荷醇随温度的升高快速挥发、分解。在40～900 ℃时，温敏型L-薄荷醇微胶囊和常规型L-薄荷醇微胶囊质量分数变化均是先减少，再缓慢减少，其次快速降低，最后趋于平缓。但温敏型L-薄荷醇微胶囊和常规型L-薄荷醇微胶囊质量分数快速降低的温度不同，温敏型L-薄荷醇微胶质量分数降低的温度为153 ℃，常规型L-薄荷醇微胶囊降低的温度为208 ℃，这表明GMS 在温度温敏型L-薄荷醇微胶囊起到了作用，当温度大于153 ℃后GMS 组分快速挥发、分解，使囊壁破裂，L-薄荷醇质量分数快速减少。
2.6 微胶囊的释放性能分析
在75 ℃的条件下，对温敏型L-薄荷醇微胶囊和常规型L-薄荷醇微胶囊的释放性能进行研究，结果如图16 所示。
图16 不同微胶囊对L-薄荷醇释放率的影响
Fig.16 Effect of different microcapsules on the release rate of L-menthol
*表示组内存在显著性差异，P＜0.05。
由图16 可知，这两类微胶囊均随着加热时间的延长，L-薄荷醇的释放率明显增加；在相同时间下（≥5 s），温敏型L-薄荷醇微胶囊比常规型L-薄荷醇微胶囊释放率更高，主要原因是GMS 的熔融特性起到了作用，当温度大于GMS 熔点时，GMS 发生融化，破坏了原有的囊壁结构，加速了温敏型微胶囊中L-薄荷醇的释放。
3 结论
本研究以GMS 与SSO 为壁材，以L-薄荷醇作为芯材进行包埋，制备了温敏型L-薄荷醇微胶囊。以芯材包埋率为考察指标，通过单因素试验、响应面试验优化L-薄荷醇微胶囊制备工艺，使用扫描电子显微镜、激光粒度仪、热重分析仪对微胶囊的形貌特征进行表征，并进行L-薄荷醇释放效率的探究。结果表明，在固形物含量21%、GMS 与SSO 质量比0.16、芯材与壁材质量比0.19、干燥温度42 ℃的条件下，制备的L-薄荷醇微胶囊包埋率可达91.89%。该条件下制备的微胶囊微观结构完整、呈圆球形、无黏连、颗粒分散性好，L-薄荷醇微胶囊平均粒径为1.9 μm；热重分析可知L-薄荷醇温敏型微胶囊在153～253 ℃时，L-薄荷醇质量分数从93.5% 迅速降低到35.5%；L-薄荷醇温敏型微胶囊在75 ℃加热40 s 后，L-薄荷醇可快速释放39.8%，具有良好的释放性能。
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