药食同源（medicine food homology,MFH）是指食物和药物来源于相同的植物、动物或矿物,首次提出该理论的是《黄帝内经》,强调了食疗对人体健康的重要作用,为后人养生提供了新的方向[1]。近年来,药食同源类功能食品的关注度和受欢迎程度逐步提升,市场前景广阔。2021年国家卫健委公布的药食同源目录中包含110 种药食同源物质[2]。药食同源物质含有多种有效成分,主要包括多糖、多酚、蛋白质、维生素、脂肪酸、膳食纤维等。中药多糖是来源于中药材,经提取分离纯化后制备而成的多糖,是单糖通过糖苷键连接而成的长链高分子化合物[3],易被人体吸收,具有较高的生物活性和生物相容性[4],在调节机体免疫力、抗氧化、抗炎、降血糖、抗肿瘤、调节肠道菌群等方面作用显著[5]。中药多糖在调节肠道菌群方面具有为微生物生长提供营养、塑造肠道微生物群、在宿主-肠道菌群共生中发挥广泛的作用[6]。黄芪多糖具有抗炎和免疫调节的活性,在抑制癌细胞生长方面作用效果明显[7]。枸杞多糖具有降血糖和降血脂的作用,可用于维持血糖稳定[8]。蒲公英具有抗癌、抗菌和治疗脾脏和肝脏疾病的作用[9]。蒲公英多糖也具有抗炎、抗氧化、抗菌、抗肿瘤、降血糖等作用[10]。当归多糖具有抗氧化和抗细胞凋亡作用[11]。药食同源中药多糖具有安全性高、双向免疫调节等优点,具有广泛的生理作用和潜在的临床应用价值[12]。
肠道微生物群落在维持全身和肠道免疫代谢稳态中发挥着重要作用[13],对人体营养吸收、免疫发育等至关重要。肠道益生菌通过降低肠道pH值、减少病原微生物的定植和侵袭、改变宿主免疫应答等途径发挥免疫调节作用,更好地改善肠道中的微生物平衡[14]。在抗癌、抗氧化、治疗腹泻和结肠炎等方面有着诸多应用[15-18]。木糖葡萄球菌TG022具有较强的超氧化物歧化酶（superoxide dismutase,SOD）和过氧化氢酶（catalase,CAT）等抗氧化酶活性,在氧化损伤上起到一定的保护作用。利用药食同源多糖调节肠道微生物菌群平衡,进而改善人体健康状况,成为新兴的养生保健方式。研究表明利用药食同源多糖治疗糖尿病、炎症性肠病具有一定效果,说明药食同源中药多糖在防治或改善病症方面具有一定效果[19-21]。
综上所述,本研究利用优选的蒲公英多糖、当归多糖、黄芪多糖、枸杞多糖、山药多糖5 种多糖替代LB培养基中的碳源,探究所选多糖对木糖葡萄球菌TG022的生长和产酶特性的影响,筛选出共生效果较优的多糖通过体外模拟肠道发酵,探究多糖与木葡萄糖球菌共发酵对肠道微生物的影响,以期为开发食品或功能性食品提供参考。
1 材料与方法
1.1 菌株与试剂
木糖葡萄球菌（Staphylococcus xylosus）TG022：江西省宜春市温汤长寿村地区的健康人群粪便中分离出,由中国典型培养物保藏中心保藏,保藏号CCTCC NO：M 2023516。
胰蛋白胨、酵母提取物：青岛高科技工业园海博生物技术有限公司；氯化钠、磷酸二氢钾、磷酸氢二钾、七水硫酸镁、氯化钙、碳酸氢钠、吐温-80：西陇科学股份有限公司；L-半胱氨酸：上海麦克林生化科技股份有限公司；超氧化物歧化酶试剂盒、过氧化氢酶试剂盒：武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司；1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH）自由基清除能力试剂盒：南京建成生物工程研究所有限公司；当归多糖（多糖含量30%）、枸杞多糖（多糖含量60%）、黄芪多糖（多糖含量65%）、蒲公英多糖（多糖含量35%）、山药多糖（多糖含量35%）：陕西百川生物科技有限公司。以上试剂均为分析纯。
1.2 仪器
自动粪便微生物群提取器（TG-01 Extn）、气体置换装置（TG-11）：厦门承葛生物科技有限公司；冷冻离心机（Centrifuge 5910 Ri）：赛默飞世尔（苏州）仪器有限公司；漩涡振荡仪（VM-HG）：广东省科寅实验室设备有限公司；移液器：大龙兴创实验仪器（北京）股份公司；荧光多模式酶标仪（Infinite M Nano+）：瑞士TECAN公司；电子天平（XJ120A SCS）：上海天美天平仪器有限公司；恒温摇床培养箱（ZWYC-293）：上海智城分析仪器制造有限公司；超净工作台（ZHJH-C1112B）：上海智城分析仪器制造有限公司；灭菌锅（LDAH-100L）：施都凯仪器设备（上海）有限公司；pH检测仪器（Five Easy plus）：梅特勒托利多科技（中国）有限公司。
1.3 培养基配制
LB培养基：称取酵母提取物5.00 g、胰蛋白胨10.00 g、NaCl 10.00 g,加纯化水配制成1 L。调整pH值至7.0±0.1,121 ℃灭菌20 min。
去碳培养基：称取胰蛋白胨10.00 g、NaCl 10.00 g,加纯化水配制成1 L。调整pH值至7.0±0.1,121 ℃灭菌20 min。
多糖培养基：称取胰蛋白胨10.00 g、NaCl 10.00 g,分别添加10.00 g多糖[蒲公英多糖（PGY）组、当归多糖（DG）组、枸杞多糖（GQ）组、山药多糖（SY）组、黄芪多糖（HQ）组],加纯化水配制成1 L。调整pH值至7.0±0.1,121 ℃灭菌20 min。
发酵培养基：根据Ding等[22]的方法稍作修改。称取磷酸氢二钾0.40 g、磷酸二氢钾0.40 g、氯化钠0.10 g、七水硫酸镁0.10 g、氯化钙0.10 g、碳酸氢钠2.00 g、蛋白胨2.50 g、酵母提取物2.00 g、L-半胱氨酸0.50 g,移取吐温-80 2.00 mL,加纯化水配制成1 L。调整pH值至7.0±0.1,121 ℃灭菌20 min。
1.4 不同多糖对木糖葡萄球菌生长及pH值的影响
木糖葡萄球菌经过LB培养基扩大培养,将菌液浓度稀释为OD600值在0.8～1.0之间,按1%体积接种到50 mL多糖培养基中,以LB培养基作为阳性对照组,去碳培养基作为阴性对照（QT）组。将培养基放入摇床37 ℃,200 r/min培养24 h,并于0、6、9、12、15、18、21、24 h取200 μL菌液测定OD600值,绘制生长曲线；在0、12、24 h取3 mL菌液测定pH值,依据pH差值进行绘图（24 h培养液的pH值与0 h培养液的pH值的差值）。
1.5 蒲公英多糖与当归多糖对菌株抗氧化活性的影响
将木糖葡萄球菌接种至LB培养基中扩大培养,取OD 600值在0.8～1.0之间的种子液,按1%体积加入蒲公英多糖和当归多糖培养基中,37 ℃、200 r/min培养48 h后,8 000 r/min,4 ℃离心15 min,取上清液,使用0.22 μm微孔滤膜过滤,使用试剂盒测定SOD酶活、CAT酶活和DPPH自由基清除能力。
1.6 蒲公英多糖和当归多糖与木糖葡萄球菌体外共发酵
1.6.1 人体肠道微生物群的提取与处理
经厦门大学医学院医学伦理委员会审批,在所有参与者知情同意下收集样本。所有参与者都完成了一份基于问卷的访谈,并接受了筛选捐赠者的体检。通过体检与问卷调查筛选出健康人群供体,使用自动粪便微生物群提取器提取粪便微生物群。5 000 r/min离心5 min收集粪便菌泥,将收集到的菌泥以1∶1.1（体积比）的比例添加生理盐水,获得健康人群的原始肠道粪菌。
1.6.2 体外共发酵
试验设计5 个试验组,分别为阴性对照（LB培养基+木糖葡萄球菌,Y）组、当归多糖（DG）组、蒲公英多糖（PGY）组、当归多糖+木糖葡萄球菌（M-DG）组、蒲公英多糖+木糖葡萄球菌（M-PGY）组；发酵液的体系为35 mL,接种10%的人体肠道粪菌悬液（3.5 mL）；通过气体置换装置,将发酵瓶抽真空-充氮气往复循环3 次,每次10 min。厌氧处理后用无菌封口膜保持厌氧,37 ℃、200 r/min条件下发酵24 h。
1.6.3 发酵液pH值
在粪菌发酵的0、6、24 h分别用一次性无菌注射器取2 mL发酵液,测定其pH值的变化。
1.6.4 16S rRNA基因高通量测序
取5 mL发酵液添加到裂解液中提取DNA用于16S rRNA基因高通量测序。使用引物（515F5′-GTGYCAGCMGCCGGTAA-3′,806R5′-GGACTACNVGGGTWTCTAAT-3′）对细菌16S rRNA基因的V4可变区进行聚合酶链式反应（polymerase chain reaction,PCR）扩增。
使用FLASH进行序列片段拼接,再使用Cutadapt（V1.13）对FLASH处理的序列数据进行修剪和过滤,删除引物序列和少于指定碱基数的序列。使用Usearch对序列进行质量过滤,去除嵌合体。取97%相似性的嵌合序列和聚集序列进行聚类生成操作分类单元（operational taxonomic units,OTU ）分析。OTU的代表序列与SILVA 132数据库比对,用于RDP Classifier分类并聚合到不同的分类水平。
根据每个样本的OTU表,计算每个样本之间的多样性指数,α多样性指数的显著性采用Wilcoxon检验方法,包括细菌丰富度,Shannon 指数和均匀度（J）。β多样性指数的显著性使用置换多元方差分析,基于Bray-Curtis距离的主坐标轴进行分析（principal co-ordinates analysis,PCoA）,可视化各组样本之间微生物群落结构的差异性。采用线性判别分析（linear discriminant analysis,LDA）来估算每个物种丰度对差异效果影响的大小,进而找出两组或多组内有显著性差异的物种。
1.7 数据处理
所获得的数据用平均值±标准差表示,采用SPSS 26.0统计软件进行单因素方差分析（one way analysis of variance,one way-ANOVA）；统计学差异采用Graph-Pad Prism 8.0软件作图。
2 结果与分析
2.1 不同多糖对木糖葡萄球菌的影响
不同多糖对木糖葡萄球菌生长和pH差值的影响见图1。
图1 5 种多糖对木糖葡萄球菌生长曲线和pH差值变化的影响
Fig.1 Effects of polysaccharides from five Chinese herbal medicines on the growth curve and pH difference of Staphylococcus xylosus
A.木糖葡萄球菌生长曲线；B.菌落pH差值。
由图1A可知,随着发酵时间的延长,木糖葡萄球菌在6～12 h达到对数生长期。在12 h时,阳性对照组OD600值为1.01,蒲公英多糖组OD600值高达1.26,当归多糖组OD600值为0.88,其他多糖组OD600值远低于LB培养基组。结果表明,蒲公英多糖对木糖葡萄球菌的生长具有更显著的促进作用,优于阳性对照组LB培养基；当归多糖对菌种生长的促进效果相对较弱,略低于LB培养基。
由图1B可知,阳性对照组pH差值为-0.78,蒲公英多糖组pH差值为-1.59,当归多糖组pH差值为-0.72,其他多糖组pH差值远高于LB培养基组。结果表明,在pH差值变化方面蒲公英多糖优于LB培养基,当归多糖与LB培养基效果相当。
结合生长曲线和pH差值变化,与LB培养基相比,添加蒲公英多糖作为碳源能够促进木糖葡萄球菌的生长,添加当归多糖作为碳源可以保证木糖葡萄球菌的生长,其他多糖严重影响木糖葡萄球菌的生长。
2.2 蒲公英多糖与当归多糖对菌株抗氧化活性的影响
蒲公英多糖与当归多糖抗氧化活性测试结果见表1。
表1 蒲公英多糖与当归多糖抗氧化活性测试结果
Table 1 Antioxidant activities of Taraxaci Herba polysaccharide and Angelicae Sinensis Radix polysaccharide
注：同列不同小写字母表示具有显著性差异,P<0.05。
1.0组别当归多糖蒲公英多糖LB培养基+木糖葡萄球菌当归多糖+木糖葡萄球菌蒲公英多糖+木糖葡萄球菌0.5组别值LBQTDGGQHQPGYSY pH差0-0.5-1.0-1.5-2.0 CAT酶活/（U/mL）4.26±1.06c 10.56±0.02b 9.28±1.89b 6.09±1.09c 14.45±1.27a SOD酶活/（U/mL）1 190.72±147.01b 992.64±32.26c 948.16±71.49c 1579.84±29.39a 1 020.48±27.69c DPPH·清除率/%9.59±1.05e 17.69±0.52d 28.81±0.82c 47.66±1.14b 53.54±2.13a
由表1可知,蒲公英多糖作为碳源与木糖葡萄球菌共同培养后所得菌液的CAT酶活、DPPH自由基清除率显著提高,分别为14.45 U/mL、53.54%,SOD酶活无明显提高。当归多糖作为碳源与木糖葡萄球菌共同培养后所得菌液SOD酶活、DPPH自由基清除率较高,为1 579.84 U/mL、47.66%,CAT酶活低于LB培养基+木糖葡萄球菌组。
结果表明,蒲公英多糖与当归多糖作为碳源配制培养基与木糖葡萄球菌共同培养所得菌液抗氧化活性有显著提高,且两种多糖对CAT酶活和SOD酶活表现出了差异性。
2.3 蒲公英多糖和当归多糖与木糖葡萄球菌体外共发酵pH差值变化
体外共发酵液不同组别的pH差值变化见图2。
图2 体外共发酵液不同组别的pH差值变化
Fig.2 pH differences of intestinal fermentation broths in vitro in different groups
由图2可知,除阴性对照组外,其余4 组的pH差值随着发酵时间的延长而降低趋势,多糖组与添加木糖葡糖球菌多糖组相比pH差值变化无明显差别,添加木糖葡糖球菌多糖组略高于多糖组。发酵24 h,M-PGY组pH变化值最大,pH差值为-3.29。
2.4 蒲公英多糖和当归多糖与木糖葡萄球菌体外共发酵对细菌多样性的影响
2.4.1 α和β多样性分析
5 个组别的体外共发酵液进行测序及差异性分析,结果如表2所示。
表2 不同组别体外共发酵液的Alpha多样性指数
Table 2 Alpha diversity indexes of in vitro co-fermentation broths in different groups
注：同列不同小写字母表示差异显著,P<0.05。
组别Y DG PGY M-DG M-PGY Obseaved 231.00±5.57a 211.41±3.46c 219.07±3.61ab 215.00±2.65bc 214.63±3.61bc Chao1 237.39±8.55a 223.94±11.76a 231.50±8.72a 230.87±8.15a 223.14±9.72a ACE 238.45±7.09a 221.88±5.83cd 228.29±5.02ab 225.13±3.03bc 218.32±3.29d Shannon 2.81±0.16a 2.48±0.06c 2.59±0.13bc 2.63±0.03b 2.95±0.22a Simpson 0.84±0.02a 0.84±0.01a 0.81±0.03a 0.84±0.04a 0.88±0.04a J 0.52±0.03a 0.46±0.01c 0.48±0.02bc 0.49±0.01b 0.55±0.04a
由表2可知,Y组Observed指数差异高于其他4 组。M-DG组Obseaved指数、Chao1、ACE、Shannon、Simpson、J指数均高于DG组,表明添加了木糖葡萄球菌与当归多糖后发酵液的菌群丰度有增长趋势。
不同组别体外共发酵液的细菌群落的菌落结构结果如图3所示。
图3 不同组别体外共发酵液细菌群落的菌落结构分析
Fig.3 Bacterial community structures in in vitro co-fermentation broths of different groups
A.基于不同组别体外共发酵液菌群间Bray-Curtis距离的主坐标分析；B.基于不同组别体外共发酵液菌群的非度量多维尺度分析。
由图3可知,随着多糖的加入,阴性对照组、DG与M-DG、PGY与M-PGY之间有着明显的细菌群落结构差异。另外在同样的多糖发酵液的组别中,因为木糖葡萄球菌的加入,使得相同多糖组别之间的群落结构也产生了差异性。
2.4.2 细菌的多样性及丰度
对各组发酵液的菌落结构进行分析后,总计有8 个细菌门和120 个细菌属,不同组别体外共发酵液的细菌群落门、属水平的相对丰度及属水平的差异箱线图见图4。
图4 不同组别体外共发酵液的细菌群落门、属水平的相对丰度及属水平的差异箱线图
Fig.4 Relative abundance of bacteria in in vitro fermentation broths of different groups at the phylum and genus levels and boxplot at the genus level
A.门水平相对丰度图；B.属水平相对丰度图；C.属水平差异箱线图。
由图4A可知,从门分类学水平上,每个组别变形菌门都占据了一定的丰度。与Y组相比较,DG和MDG组拟杆菌门的丰度增加,且M-DG组拟杆菌门的丰度高于DG组,表明木糖葡萄球菌的添加可以促使拟杆菌门丰度的增加。PGY和M-PGY组别的厚壁菌门丰度增加。
由图4B和图4C可知,所示在属分类学水平上,与Y组相比,DG组与M-DG组的拟杆菌属（Bacteroides）、巨单胞菌属（Megamonas）和罗氏菌属（Roseburia）相对丰度增加；PGY组与M-PGY组的双歧杆菌属（Bifidobacterium）、巨单胞菌属和罗氏菌属相对丰度增加。相同药食同源多糖发酵组别中,木糖葡萄球菌的加入,使得有益菌拟杆菌属、巨单胞菌属、罗氏菌属和双歧杆菌属的丰度提高,副萨特氏菌属（Parasutterella）、埃希氏菌属（Escherichia）、志贺氏菌属（Shigella）、克雷伯氏菌属（Klebsiella）等致病菌属的丰度降低。
对5 个组进行LEfSe分析,筛选标准设置为LDA>4。结果见图5。
图5 不同丰度差异的LDA评分直方图组
Fig.5 Histogram of LDA scores for abundance differences
由图5可知,拟杆菌属、双歧杆菌属在添加当归多糖、蒲公英多糖的组别（M-DG、M-PGY）中丰度占据较大的比例,M-DG组显著富集了g_Bacteroides、o_Bacteroides、p_Bacteroides、c_Bacteroida。M-PGY组显著富集了o_Bifidobacteriales、f_Bifidobacteriaceae。结果与图4B、图4C细菌群落属水平分析结果一致。
3 讨论与结论
本研究选择蒲公英多糖、当归多糖、黄芪多糖、枸杞多糖、山药多糖5 种多糖替代LB培养基中的碳源,对木糖葡萄球菌TG022的生长和产酶特性的影响,结果表明,在促进木糖葡萄球菌TG022的生长方面,蒲公英多糖对木糖葡萄球菌TG022生长起促进作用,当归多糖的作用相对较弱与LB组相近,其他3 种多糖严重影响木糖葡萄球菌TG022生长。在产酶特性方面,添加蒲公英多糖的发酵液上清CAT酶活提高了55.71%,SOD酶活提高了7.62%,对DPPH自由基的清除效果提高了85.84%。添加当归多糖的发酵液上清SOD酶活提高了66.62%,对DPPH自由基的清除效果提高了65.43%,CAT酶活与LB组相比略有下降。蒲公英多糖、当归多糖两种多糖培养基,使木糖葡萄球菌本身较突出的抗氧化效果得到显著提高。
蒲公英多糖、当归多糖、木糖葡萄球菌与肠道粪菌体外模拟肠道厌氧共发酵结果表明,添加了当归多糖与蒲公英多糖后,发酵液的pH值降低,进而影响到了肠道微生物菌群的结构。与对照组相比较,DG与PGY组中,双歧杆菌属、巨单胞菌属等益生菌属丰度上升,但是因为多糖被分解利用导致发酵液中碳源增加,也使致病菌副萨特氏菌属、克雷伯氏菌属等致病菌属丰度上升。M-DG与M-PGY组提高了拟杆菌门、厚壁菌门、双歧杆菌属、巨单胞菌属和罗氏菌属的丰度且高于DG与PGY,还降低了致病菌副萨特氏菌属、埃希氏菌属、志贺氏菌属、克雷伯氏菌属等的丰度。在木糖葡萄球菌与多糖的共同作用下,有益菌双歧杆菌属与拟杆菌属的丰度上升,为人体的健康提供了保障,致病菌的丰度下降,也减少了影响机体健康的风险。
综上所述,蒲公英多糖和当归多糖可以作为木糖葡萄球菌TG022的碳源,促进其生长和提高其抗氧化酶活性,同时也能调节肠道微生物菌群的结构。然而,本研究仅初步探讨了蒲公英多糖和当归多糖对木糖葡萄球菌生长和肠道微生物菌群的影响,其具体作用机制还需进一步研究。研究结果对于深入理解多糖与益生菌木糖葡萄球菌在肠道微生物环境中的作用具有重要的科学意义,并为开发基于药食同源物质的益生菌产品提供了理论依据。
[1]XU J Q, ZHANG J L, SANG Y M, et al.Polysaccharides from medicine and food homology materials: A review on their extraction, purification, structure, and biological activities[J].Molecules, 2022,27(10): 3215.
[2]XUE H K, WANG W L, BIAN J Y, et al.Recent advances in medicinal and edible homologous polysaccharides: Extraction, purification, structure, modification, and biological activities[J].International Journal of Biological Macromolecules, 2022, 222(Pt A): 1110-1126.
[3]NAVARRO D M D L, ABELILLA J J, STEIN H H.Structures and characteristics of carbohydrates in diets fed to pigs: A review[J].Journal of Animal Science and Biotechnology, 2019, 10: 39.
[4]SINDHU R K, GOYAL A, DAS J, et al.Immunomodulatory potential of polysaccharides derived from plants and microbes: A narrative review[J].Carbohydrate Polymer Technologies and Applications, 2021, 2: 100044.
[5]FERREIRA S, ARAUJO T, SOUZA N, et al.Physicochemical, morphological and antioxidant properties of spray-dried mango kernel starch[J].Journal of Agriculture and Food Research, 2019, 1: 100012.
[6]PORTER N T, MARTENS E C.The critical roles of polysaccharides in gut microbial ecology and physiology[J].Annual Review of Microbiology, 2017, 71: 349-369.
[7]LI R, CHEN W C, WANG W P, et al.Extraction, characterization of Astragalus polysaccharides and its immune modulating activities in rats with gastric cancer[J].Carbohydrate Polymers, 2009, 78(4):738-742.
[8]MASCI A, CARRADORI S, CASADEI M A, et al.Lycium barbarum polysaccharides: Extraction, purification, structural characterisation and evidence about hypoglycaemic and hypolipidaemic effects.A review[J].Food Chemistry, 2018, 254: 377-389.
[9]FAN M, ZHANG X, SONG H P, et al.Dandelion (Taraxacum genus): A review of chemical constituents and pharmacological effects[J].Molecules, 2023, 28(13): 5022.
[10]LIS B, ROLNIK A, JEDREJEK D, et al.Dandelion (Taraxacum officinale L.) root components exhibit anti-oxidative and antiplatelet action in an in vitro study[J].Journal of Functional Foods, 2019,59: 16-24.
[11]DU K H, WANG L, WANG Z L, et al.Angelica sinensis polysaccharide antagonizes 5-fluorouracil-induced spleen injury and dysfunction by suppressing oxidative stress and apoptosis[J].Biomedicine& Pharmacotherapy=Biomedecine & Pharmacotherapie, 2023, 162:114602.
[12]LI X J, CHEN C, LENG A J, et al.Advances in the extraction, purification, structural characteristics and biological activities of Eleutherococcus senticosus polysaccharides: A promising medicinal and edible resource with development value[J].Frontiers in Pharmacology, 2021, 12: 753007.
[13]NEEDELL J C, ZIPRIS D.The role of the intestinal microbiome in type 1 diabetes pathogenesis[J].Current Diabetes Reports, 2016, 16(10): 89.
[14]WILLIAMS N T.Probiotics[J].American Journal of Health-System Pharmacy: AJHP: Official Journal of the American Society of Health-System Pharmacists, 2010, 67(6): 449-458.
[15]HUANG C L, HAO W J, WANG X Y, et al.Probiotics for the treatment of ulcerative colitis: A review of experimental research from 2018 to 2022[J].Frontiers in Microbiology, 2023, 14: 1211271.
[16]LEGESSE BEDADA T, FETO T K, AWOKE K S, et al.Probiotics for cancer alternative prevention and treatment[J].Biomedicine &Pharmacotherapy, 2020, 129: 110409.
[17]WANG Y, WU Y P, WANG Y Y, et al.Antioxidant properties of probiotic bacteria[J].Nutrients, 2017, 9(5): 521.
[18]ALLEN S J, MARTINEZ E G, GREGORIO G V, et al.Probiotics for treating acute infectious diarrhoea[J].Prescriber, 2010, 21(23/24): 36.
[19]王梦婕, 魏平, 杨思晔, 等.药食同源中药多糖防治糖尿病多组学与交叉组学机制初探[J].中药药理与临床, 2023, 39(8): 2-11.WANG Mengjie, WEI Ping, YANG Siye, et al.A preliminary study on multi-omics and cross-omics mechanism of traditional Chinese medicine polysaccharide with drug-food homology in the prevention and treatment of diabetes[J].Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica, 2023, 39(8): 2-11.
[20]XIA X Y, XIAO J.Natural ingredients from medicine food homology as chemopreventive reagents against type 2 diabetes mellitus by modulating gut microbiota homoeostasis[J].Molecules, 2021, 26(22): 6934.
[21]宋美俊, 刘语萌, 武俊瑞, 等.药食同源植物多糖与肠道菌群互作并改善炎症性肠病研究进展[J].中国现代中药, 2022, 24(11):2081-2092.SONG Meijun, LIU Yumeng, WU Junrui, et al.Polysaccharides from plants with both medicinal and edible values interact with intestinal flora to alleviate inflammatory bowel diseases: A review[J].Modern Chinese Medicine, 2022, 24(11): 2081-2092.
[22]DING Q, NIE S P, HU J L, et al.Invitro and invivo gastrointestinal digestion and fermentation of the polysaccharide from Ganoderma atrum[J].Food Hydrocolloids, 2017, 63: 646-655.