混菌发酵对西拉葡萄酒香气品质的影响

邢家爱1,于庆泉2,李福东2,锁然1,党超1,王颉1*,刘亚琼1*

(1.河北农业大学 食品科技学院,河北 保定 071000;2.中粮长城桑干酒庄(怀来)有限公司,河北 张家口 075400)

摘 要:为探究非酿酒酵母与酿酒酵母混合发酵对西拉葡萄酒香气品质的影响,以酿酒酵母单菌发酵为对照,分别将商业戴尔有孢圆酵母、本土美极梅奇酵母和本土葡萄汁有孢汉逊酵母与酿酒酵母顺序接种发酵,以及本土美极梅奇酵母和本土葡萄汁有孢汉逊酵母共同与酿酒酵母顺序接种发酵。采用顶空固相微萃取结合气相色谱质谱联用技术测定酒样的挥发性香气成分,并对葡萄酒进行基本理化指标检测和感官评价。结果表明:与单菌发酵相比,混合发酵处理酒样的乙醇含量降低了2.5%~4.0%,同时甘油含量增加了12.3%~15.3%,色度提升了3.6%~20.3%。此外,混合发酵处理酒样的挥发性香气物质总量增加了2.7%~19.5%,其中本土美极梅奇酵母与酿酒酵母混合发酵的酒样(FM)香气物质含量最丰富,乙酸异戊酯、乙酸苯乙酯、正己醇和异丁醇等化合物的含量显著增加。感官评价结果表明,FM处理的葡萄酒花香和果香味更为浓郁,香气更复杂并且具有良好的口感,整体评分最高。

关键词:西拉葡萄酒;非酿酒酵母;混合发酵;香气;感官评价

西拉(Syrah)葡萄原产于法国罗讷河谷,是世界第四大红色酿酒品种,我国第五大红色酿酒品种。近几年西拉葡萄在我国的种植面积稳步增加,据统计,2016 年我国西拉葡萄种植面积约1 000 hm2,占世界该品种栽培面积的0.6%。西拉所酿葡萄酒因具有浓郁的浆果香、烤肉味以及黑胡椒香气特征而深受消费者喜爱[1]。但国内关于西拉葡萄酒的风味研究相对较少,主要涉及栽培技术对果实品质的影响以及陈酿条件对西拉葡萄酒品质的影响[1-3],酵母菌种对其风味品质的影响尚不明确。

葡萄酒的酒精发酵是涉及多种微生物复杂生化反应的过程,作为主导微生物的酵母菌的种类以及菌种间的相互作用均会影响代谢物的种类和含量[4-5]。目前,葡萄酒生产企业广泛使用商业酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)进行酒精发酵以便最大程度地保证发酵的顺利完成,并获得稳定的产品质量,但这在一定程度上削弱了葡萄酒的产区独特性[6-7]。研究发现,本土微生物菌群更适应当地的气候、土壤和微生态条件,应用本土酵母菌进行发酵有利于增强葡萄酒风味多样性和产区典型性[8-9]。葡萄生长环境中存在着多种非酿酒酵母(non-Saccharomyces cerevisiae),其分泌的糖苷酶可促进葡萄汁中的糖苷前体物质水解生成挥发性香气化合物,但难以单独完成酒精发酵,通常与酿酒酵母进行混合发酵以改善葡萄酒的风味品质[10-12]。研究表明,戴尔有孢圆酵母参与发酵能提高苯乙醇、辛酸乙酯和癸酸乙酯等的含量,增强马瑟兰葡萄酒的花果香味[13]。美极梅奇酵母与S.cerevisiae 混合发酵提高了澳大利亚西拉葡萄酒中乙酸苯乙酯、庚酸乙酯和芳樟醇等的含量,赋予葡萄酒愉悦的风味[14]。Mestre等[15]报道称,顺序接种有孢汉逊酵母和S.cerevisiae 的马尔贝克葡萄酒中乙酸异戊酯、己酸乙酯和γ-丁内酯的含量高于酿酒酵母单菌发酵的葡萄酒,对葡萄酒的感官特性有积极影响。然而,非酿酒酵母与酿酒酵母混合发酵对国产西拉葡萄酒风味品质的影响研究鲜有报道。

本研究以怀来产区西拉葡萄为原料,选用本土美极梅奇酵母和本土葡萄汁有孢汉逊酵母及商业戴尔有孢圆酵母,分别与酿酒酵母F15 按照不同接种方案进行发酵试验,探究混合发酵对葡萄酒理化指标、挥发性香气成分以及感官品质的影响,旨在为非酿酒酵母对西拉葡萄酒风味品质的改善研究提供参考。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

西拉葡萄:2021 年10 月采自河北怀来桑干酒庄葡萄园,还原糖含量242.6 g/L,可滴定酸含量(以酒石酸计)5.67 g/L。

酿酒酵母(S.cerevisiae)F15:法国LAFFORT 公司;商业戴尔有孢圆酵母(Torulaspora delbrueckii):安琪酵母股份有限公司; 本土美极梅奇酵母(Metschnikowia pulcherrima)、本土葡萄汁有孢汉逊酵母(Hanseniaspora uvarum):均由河北农业大学果蔬加工贮藏实验室前期在怀来产区筛得,保藏于河北农业大学食品科技学院。

YPD 培养基:葡萄糖20 g/L、蛋白胨20 g/L、酵母浸粉10 g/L、琼脂20 g/L(固体培养基时加入),高压灭菌20 min。

葡萄汁培养基:葡萄汁高压灭菌20 min。

果胶酶(食品级,8 600 PGNU/g):法国LAFFORT公司;偏重亚硫酸钾、氯化钠(食品级):国药集团化学试剂有限公司;3-辛醇标准品:美国Sigma-Aldrich 公司;柠檬酸(分析纯):天津市北辰方正试剂厂;磷酸氢二钠(分析纯):天津市科密欧化学试剂有限公司。

1.2 仪器与设备

7890B -5977A 气相色谱质谱联用仪、HP -INNOWAX 色谱柱(60 m×250 μm,0.25 μm):美国Agilent公司;57328-U 固相微萃取仪:美国Supelco 公司;Wine Scan FT 120 葡萄酒成分分析仪:丹麦FOSS 公司;SPX 生化培养箱:宁波东南仪器有限公司;HZQ-F全温振荡培养箱:哈尔滨市东联电子技术开发有限公司;TU-1810 紫外分光光度计:北京普析通用仪器有限责任公司。

1.3 试验方法

1.3.1 酵母培养

商业酿酒酵母菌株的活化:称取S.cerevisiae F15活性干粉(100 mg/L),将其溶于10 倍体积的37 ℃的无菌水中活化20 min。称取T.delbrueckii 活性干粉(200 mg/L),将其溶于10 倍体积的25 ℃的无菌水中活化20 min。

本土非酿酒酵母菌株的活化:从YPD 固体培养基上挑取M.pulcherrima 和H.uvarum 的单菌落分别接入YPD 液体培养基中,28 ℃摇床培养24 h,以2%的接种量接种到葡萄汁培养基中,28 ℃培养48 h 后以2%的接种量进行酒精发酵。

1.3.2 发酵试验

西拉葡萄除梗破碎后加入20 mg/L 果胶酶,50 mg/L偏重亚硫酸钾,分装于5 L 玻璃发酵罐中,每罐约3.5 L西拉葡萄醪,低温浸渍48 h,按照表1 的接种方案接入酵母种子液,15~25 ℃发酵,每个处理3 组平行。每天监测发酵液比重,当比重降至0.996 时测定发酵液中残糖含量,当残糖含量小于4 g/L 时,分离皮渣,从每个发酵罐中取200 mL 酒样,于-20 ℃保存待测。

表1 发酵试验接种方案
Table 1 Inoculation programme of fermentation test

注:F15 表示酿酒酵母F15 单独发酵;FN 表示酿酒酵母F15 与T.delbrueckii 混合发酵;FM 表示酿酒酵母F15 与M.pulcherrima 混合发酵;FH 表示酿酒酵母F15 与H.uvarum 混合发酵;FMH 表示酿酒酵母F15 与M.pulcherrima 和H.uvarum 混合发酵。

?样品名称 0 d 3 d F15(对照) S.cerevisiae FN T.delbrueckii S.cerevisiae FM M.pulcherrima S.cerevisiae FH H.uvarum S.cerevisiae FMH M.pulcherrima+H.uvarum S.cerevisiae

1.4 试验指标测定方法

1.4.1 基本理化指标

酒精度、还原糖含量、总酸含量、pH 值和甘油含量等基本理化指标利用葡萄酒成分分析仪测定,透射扫描波数5 012~926 cm-1

色度及色调:参考李运奎等[16]的方法测定。酒样经0.45 μm 滤膜过滤,配制与酒样相同pH 值的磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液将酒样稀释10 倍,将待测样品放入1 cm 比色皿中,分别测定其在波长420、520、620 nm下的吸光值A420、A520、A620,色度为三者之和,色调为A420 与A520 的比值。

1.4.2 挥发性香气化合物

采用气相色谱质谱联用仪测定酒样中挥发性香气物质,参照夏亚男等[17]的方法并稍作改动。吸取8 mL待测酒样于20 mL 样品瓶中,同时加入10 μL 的3-辛醇(300 mg/L)和2 g NaCl,立即盖紧瓶盖密封。40 ℃水浴平衡15 min 后,将萃取头插入样品瓶顶空部分吸附40 min,于气相色谱仪进样口解吸6 min。

色谱条件:升温程序为50 ℃保持2 min,以3 ℃/min的速率升温至80 ℃,再以5 ℃/min 速率升温至230 ℃,持续6 min。进样口温度为240 ℃,不分流进样,载气为高纯氦气,流速为1 mL/min。

质谱条件:电子轰击电离源;电子能量70 eV;离子源温度230 ℃;四极杆温度150 ℃;质谱扫描范围m/z 35~550。

定性与定量分析:利用质谱扫描图谱与NIST14.L谱库进行比对定性,对匹配度为80%以上的组分进行分析。各成分的含量采用内标法进行半定量,选用3-辛醇作为内标物质。

1.4.3 感官评价

品评小组由7 名经验丰富的品酒师和5 名经过专业培训的品评人员组成,采用盲品的方式。在光线充足、通风良好、无异味的房间内进行3 轮。分别从外观(澄清度、色泽)、香气(花香、果香、酒精味)、口感(酸度、甜度、收敛性)和整体评分4 个方面对酒样进行评价,按照10 分制强度等级进行打分,评分范围从0(弱)到10(强),感官评价结果为所有评估小组成员得分的平均值。

1.5 数据统计分析

试验结果用平均值±标准差表示,使用SPSS26 软件进行方差分析和邓肯多重比较,显著性水平P<0.05;使用Origin 2021 软件进行绘图和主成分分析。

2 结果与分析

2.1 酒精发酵过程中比重的变化

不同处理酒样的比重变化如图1 所示。

图1 酒精发酵过程比重的变化
Fig.1 Change of specific gravity during alcohol fermentation

由图1 可知,各处理酒样的比重随发酵时间的延长呈持续下降趋势,不同处理酒样的比重下降速率存在差异。发酵前3 d,各处理酒样比重下降均较缓慢,变化不明显。随后比重快速下降,从发酵第10 天开始各处理酒样比重下降速率趋缓,发酵12 d 时F15 处理酒精发酵结束,15 d 时其余处理均完成酒精发酵,且所有处理最终达到相似比重。混合发酵延长了酒精发酵时间,这与Hranilovic 等[14]的研究结果一致。

2.2 不同处理对西拉葡萄酒基本理化指标的影响

酒精发酵结束时酒样的基本理化指标如表2 所示。

表2 酒精发酵后酒样的基本理化指标
Table 2 Basic physical and chemical indexes of wine samples after alcohol fermentation

注:同列不同字母表示差异显著(P<0.05)。

样品名称 酒精度/(% vol) 还原糖含量/(g/L) 总酸含量/(g/L) 甘油含量/(g/L) pH 值 色度 色调F15 13.06±0.16a 1.69±0.05c 5.37±0.08d 8.38±0.16b 3.63±0.04a 10.81±0.01e 0.68±0.01a FN 12.54±0.09e 3.86±0.13a 5.63±0.01b 9.66±0.18a 3.59±0.05b 12.02±0.02c 0.56±0.00e FM 12.69±0.07c 3.46±0.08b 5.41±0.07c 9.56±0.08a 3.62±0.04a 11.20±0.01d 0.64±0.00b FH 12.57±0.04d 3.84±0.20a 5.64±0.05b 9.48±0.20a 3.59±0.13b 12.25±0.03b 0.61±0.00d FMH 12.74±0.08b 3.67±0.15ab 5.76±0.05a 9.41±0.07a 3.57±0.62c 13.00±0.02a 0.62±0.02c

由表2 可知,5 个处理的还原糖含量均小于4 g/L,混合发酵处理的酒精度(12.54% vol~12.74% vol)均显著低于F15 处理(13.06% vol)(P<0.05),这与宋茹茹等[18]的研究结果一致。非酿酒酵母通过氧化消耗葡萄糖生成除乙醇外的其他代谢产物,从而降低酒样的乙醇含量[19]。此外,混合发酵的葡萄酒中甘油含量提高了12.3%~15.3%,甘油可以增加葡萄酒的黏度,赋予葡萄酒圆润的口感和丰满的酒体。相关研究显示,非酿酒酵母具有较强的产甘油能力,如H.uvarum 与S.cerevisiae混合发酵的甘油含量高于酿酒酵母单独发酵[20]。混合发酵显著提高了葡萄酒色度(P<0.05),这可能与混合发酵处理丙酮酸含量增加有关,丙酮酸与花色苷形成色素vitisin A,有助于增加色素稳定性[21]。与单菌发酵相比,混合发酵葡萄酒的色调显著降低(P<0.05),颜色更偏向红色,这与梁丽红等[22]的研究结果一致。

2.3 香气成分分析

不同处理对西拉葡萄酒挥发性香气化合物的影响如表3 所示。

表3 不同试验处理葡萄酒的香气成分及其含量
Table 3 Aroma components and their contents in wine samples with different test treatments

香气物质 香气成分含量/(μg/L) 香气描述F15 FN FM FH FMH 阈值Y1 乙酸己酯 47.67±4.26c 55.76±7.11c 186.81±6.73a 158.13±13.44b 152.28±14.99b 670 水果味,梨,樱桃Y2 乙酸异戊酯 242.80±12.75d 528.69±28.38b 738.63±37.95a 374.28±14.69c 433.20±54.95c 30 香蕉香,梨香Y3 乙酸苯乙酯 29.29±2.82d 315.21±24.86ab 323.13±14.35a 262.83±18.05c 287.36±17.21bc 250 栀子花,玫瑰花香Y4 乙酸庚酯 ND ND 4.99±0.47a ND ND Y5 乙酸乙酯 1 997.21±117.92d 5 054.41±62.74c 6 053.57±350.10a 5 795.81±173.39ab 5 448.97±147.56b 7 500 果香,指甲油乙酸酯类 2 316.97±125.11d 5 954.07±88.96c 7 307.14±312.31a 6 591.06±191.86b 6 321.81±97.93b Y6 辛酸乙酯 4 281.69±161.54bc 4 088.86±204.66c 4 627.27±109.03ab 4 985.43±257.86a 4 038.04±264.46c 5 梨香,菠萝,茴香味Y7 癸酸乙酯 5 153.09±289.08a 3 711.78±257.98b 3 711.55±402.59b 3 333.64±149.41b 3 652.35±392.58b 200 椰子味,水果香Y8 庚酸乙酯 84.47±14.51a 34.56±3.45c 51.01±1.49b 60.29±5.92b ND 220 菠萝,果香Y9 丁酸乙酯 39.11±3.53c 69.32±8.93b 102.03±8.01a 49.53±3.43c 44.40±4.73c 20 甜果香,草莓香Y10 己酸乙酯 2 069.80±50.64b 2 521.77±154.94a 2 286.58±149.19b 2 261.78±153.78b 2 073.02±109.02b 14 青苹果,草莓,香蕉Y11 月桂酸乙酯 131.97±18.09e 249.94±8.94d 388.58±13.49b 467.64±16.18a 341.03±19.35c 1 500 甜味,花香,奶油Y12 棕榈酸乙酯 18.93±1.62 ND ND ND ND 1 500 奶油Y13 9- 癸烯酸乙酯 1 058.09±121.25a 745.81±35.99b 759.19±57.01b 784.00±53.76b 990.25±79.89a 100 Y14 反式-2- 己烯酸乙酯 9.66±1.02b 12.97±0.42a ND ND ND 0.02 香辛料,糖果,泥土Y15 丁二酸二乙酯 374.69±27.32b 370.14±8.70b 465.11±17.03a ND 199.87±7.93c 1 200 葡萄香气乙醇酯类 13 221.48±108.7a 11 805.15±496.49bc 12 391.33±309.25b 11 942.31±332.28bc 11 338.96±634.79c Y16 己酸异戊酯 226.54±5.68a ND ND ND 81.36±10.75b 香蕉,苹果,菠萝Y17 辛酸甲酯 14.45±1.26b ND ND 27.86±0.79a ND 200 柑橘,水果味其他酯类 240.99±6.14a ND ND 27.86±0.79c 81.36±10.75b酯类 15 779.44±179.17c 17 759.22±543.57b 19 698.47±356.31a 18 561.23±504.92b 17 742.12±581.75b Y18 庚醇 83.30±8.08a ND 85.04±1.37a 89.70±2.11a 64.00±4.23b 200 柠檬,橘子Y19 苯甲醇 15.95±2.29a 11.89±1.31b 10.15±0.11bc 6.90±0.06d 8.50±0.89cd 200 000 苦杏仁Y20 壬醇 ND ND ND ND 21.20±3.59 600 生青味,玫瑰,橙子Y21 苯乙醇 1 709.40±76.31d 3 920.03±79.01a 3 260.32±172.28b 2 920.94±130.92c 3 320.95±124.02b 14 000 玫瑰香味,紫罗兰香,蜂蜜Y22 异戊醇 4 133.98±229.43a 3 554.13±171.75b 3 096.17±159.56c 3 260.06±56.76c 1 558.38±125.23d 30 000 溶剂味Y23 正己醇 493.20±19.74c 567.17±27.33b 603.28±11.58a 570.36±12.82b 444.28±11.88d 8 000 青草味Y24 异丁醇 72.03±6.57c 249.73±16.12a 277.78±16.21a 254.16±12.41a 123.44±11.66b 40 000 淡甜味,醇香Y25 辛醇 ND ND 45.47±3.41a 35.46±2.48b ND 40 茉莉、柠檬味Y26 反式-3- 己烯-1-醇 48.56±2.59a 46.46±2.51a 48.11±1.48a 38.21±2.90b 37.85±2.55b 200 青草味,脂味Y27 丙醇 ND ND ND 43.69±2.84b 76.27±1.85a 清新醇香高级醇类 6 556.42±201.72c 8 349.41±94.64a 7 426.32±63.66b 7 219.49±204.87b 5 654.88±146.12d Y28 乙酸 143.47±19.01c 78.19±7.50d 164.34±5.76b 184.62±9.89a 48.49±1.12e 200 000 醋酸味Y29 辛酸 324.15±34.84a 22.03±2.27c 65.29±5.27b 67.34±4.78b 79.46±4.18b 500 奶酪味,涩味,腐臭味

续表3 不同试验处理葡萄酒的香气成分及其含量
Continue table 3 Aroma components and their contents in wine samples with different test treatments

注:ND 表示未检测到该物质;同行不同字母表示差异显著(P<0.05)。

香气物质 香气成分含量/(μg/L) 香气描述F15 FN FM FH FMH 阈值Y30 癸酸 64.86±5.54 ND ND ND ND 1 000 焦糖味,牛奶味Y31 己酸 157.62±7.74a 82.11±2.76c 95.16±3.91b ND 46.51±3.40d 420 奶酪,树叶味脂肪酸类 690.10±27.58a 182.34±10.07d 324.79±9.69b 251.96±6.95c 174.46±4.66d Y32 苯甲醛 53.99±4.14d 120.54±1.59c 166.00±8.39a 118.10±1.55c 153.00±12.44b 300 苦杏仁等坚果味Y33 3- 辛酮 88.69±4.70a 92.80±5.22a 92.52±4.79a 85.92±4.50a 90.17±5.31a Y34 香茅醇 30.07±0.49ab 27.42±3.98ab 34.50±9.79a 28.76±4.47ab 19.35±6.10b 100 玫瑰香味,花香,香水Y35 β- 香茅醇 23.78±1.37 ND ND ND ND 青柠檬香Y36 苯乙烯 17.61±0.40a 7.53±0.27b 6.80±0.31b 7.20±0.86b ND 730 Y37 2,4- 二叔丁基苯酚 14.14±1.82d 33.34±1.34c 38.22±3.40b 28.91±1.64c 47.00±3.49a 200 玫瑰香味其他类 228.28±2.92d 281.64±4.78c 338.04±14.03a 268.88±0.92c 309.52±13.52b总量 23 254.24±353.13c 26 572.60±449.85b 27 787.61±393.59a 26 301.56±492.14b 23 880.98±612.58c

由表3 可知,供试酒样共检测出37 种挥发性香气物质,包括17 种酯类(其中乙酸酯类5 种、乙醇酯类10 种以及其他酯类2 种)、10 种高级醇类、4 种脂肪酸类和6 种其他类化合物。不同处理对西拉葡萄酒挥发性香气成分的影响差异较大,其中FM 香气物质含量最高,为27 787.61 μg/L,对照F15 香气物质含量最低,为23 254.24 μg/L。

酯类物质是葡萄酒中重要的风味组成成分,主要包括乙酸酯和乙醇酯,它们能够为葡萄酒带来愉悦的花香和果香味[23]。本试验各处理酒样中酯类总含量从高到低依次是FM>FH>FN>FMH>F15,混合发酵有利于提升酯类产量,这与李毅丽等[24]的研究结果一致。与对照F15 相比,混合发酵处理乙酸异戊酯含量提高了54.2%~204.2%,且含量均超过其阈值,增强了葡萄酒的果香特征。乙酸苯乙酯可以赋予葡萄酒栀子花香和玫瑰花香,本试验FM 酒样中乙酸苯乙酯含量明显高于其他处理。此前有研究发现M.pulcherrima 与S.cerevisiae顺序接种发酵提高了葡萄酒中乙酸苯乙酯的含量[25]。供试酒样中共检测出10 种乙醇酯类化合物,其中辛酸乙酯(梨香、菠萝)、癸酸乙酯(椰子味、果香)和己酸乙酯(青苹果、草莓、香蕉)含量较高,对葡萄酒的果香有重要贡献,混合发酵均提高了己酸乙酯的含量。

高级醇是酵母代谢的副产物之一,在氨基酸或糖的作用下,通过Ehrlich 途径和葡萄糖合成代谢途径生成[26],对葡萄酒香气有重要影响。当含量低于300 mg/L时会增加葡萄酒的香气复杂性,当含量过高时则会给葡萄酒带来负面影响[27]。由表3 可知,混合发酵显著提高了苯乙醇含量(P<0.05),其中FN 酒样中苯乙醇含量最高,是F15 处理的2.29 倍,赋予葡萄酒玫瑰、蜂蜜、丁香花的香气。混合发酵酒样的异丁醇含量为对照的1.71 倍~3.86 倍,李毅丽等[24]和夏鸿川等[28]的研究也得到相似结果。此外,仅在FM 和FH 酒样中检测到辛醇,给葡萄酒带来了茉莉花香和柠檬香味。

葡萄酒中的脂肪酸对香气平衡起重要作用,低浓度时能赋予葡萄酒奶酪、黄油等香气特征,高浓度则会有醋酸味和刺激味[29]。本试验共检测出4 种脂肪酸,与对照F15 相比,混合发酵处理显著降低了酒样中挥发性脂肪酸总量,同时混合发酵处理的葡萄酒中辛酸和己酸的含量明显减少。这与宋茹茹等[18]的研究结果一致,T.delbrueckii 与酿酒酵母混合发酵显著降低了辛酸含量,有利于减少葡萄酒的酸败味。萜类物质具有较低阈值,对葡萄酒中花香和水果香有重要贡献[30]。本试验中测得的萜烯类化合物有香茅醇和β-香茅醇,其中β-香茅醇只在对照F15 中检测出,而香茅醇含量在各处理中差异不明显。

不同处理香气物质的主成分(principal component,PC)分析如图2 所示。

图2 香气化合物主成分分析的因子载荷图
Fig.2 Factor load diagram of principal component analysis of aroma compounds

由图2 得知,PC1 的贡献率为50.2%,PC2 的贡献率为23.5%,总贡献率为73.7%。各处理在图中彼此分离,F15 处理与顺序接种发酵处理分别位于PC1 的左右两侧且相距较远,说明混合发酵处理改变了葡萄酒的香气轮廓。其中F15 位于PC1 的正方向和PC2 的负方向上,主要有Y12(棕榈酸乙酯)、Y35(β-香茅醇)、Y30(癸酸)和Y16(己酸异戊酯)等香气成分。而混合发酵处理组均位于PC1 的负方向上,其中FMH 位于PC2 的负方向上,与Y27(丙醇)、Y20(壬醇)、Y13(9-癸烯酸乙酯)和Y37(2,4-二叔丁基苯酚)相关性强;FN、FM 和FH 位于PC2 的正方向上,酒样中Y3(乙酸苯乙酯)、Y10(己酸乙酯)、Y5(乙酸乙酯)、Y21(苯乙醇)、Y2(乙酸异戊酯)、Y6(辛酸乙酯)、Y9(丁酸乙酯)和Y23(正己醇)等香气物质含量丰富,这些物质为葡萄酒贡献了浓郁的花香味和果香味。

2.4 感官评价结果

不同处理西拉葡萄酒的感官分析结果如图3 所示。

图3 酒精发酵结束西拉葡萄酒香气轮廓图
Fig.3 Aroma profile of Syrah wine after alcohol fermentation

从外观方面来看,葡萄酒的澄清度无明显差异,混合发酵的葡萄酒色泽评分略高于对照。口感方面,混合发酵的葡萄酒酸度评分略高,各处理甜度和收敛性差别不大。在香气方面,对照组的酒精味较明显,与该处理酒样的乙醇含量较高相一致。添加非酿酒酵母发酵弱化了酒精味,并且具有更加浓郁的花香和果香味,这与混合发酵处理酒样中一些酯类物质和高级醇类物质含量增加有关,祝霞等[29]也发现混合发酵明显增强了葡萄酒的花香和果香特征。综合分析,FM 处理的酒样香气馥郁、口感平衡且酒体丰满,整体感官评分最高。

3 结论

本试验探究了不同非酿酒酵母与酿酒酵母混合发酵对西拉葡萄酒理化指标、挥发性香气成分以及感官品质的影响。结果表明:与对照F15 相比,混合发酵处理葡萄酒的乙醇含量显著降低,甘油含量及色度均显著增加(P<0.05)。在香气方面,混合发酵均提高了香气物质总量,其中FM 酒样的香气物质总量比对照增加了19.5%,增强了西拉葡萄酒愉悦的果香和花香味,感官评价结果表明FM 葡萄酒香气浓郁协调,且具有良好的口感,整体评分最高。综上所述,本土M.pulcherrima 与S.cerevisiae 顺序接种发酵对改善西拉葡萄酒的香气品质有积极作用,具有潜在的应用价值。

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Effect of Mixed Fermentation on Aroma Quality of Syrah Wine

XING Jiaai1,YU Qingquan2,LI Fudong2,SUO Ran1,DANG Chao1,WANG Jie1*,LIU Yaqiong1*
(1.College of Food Science and Technology,Agricultural University of Hebei,Baoding 071000,Hebei,China;2.COFCO Greatwall Chateau Sungod(Huailai)Co.,Ltd.,Zhangjiakou 075400,Hebei,China)

Abstract:To explore the effect of mixed fermentation of non-Saccharomyces cerevisiae and Saccharomyces cerevisiae on the aroma quality of Syrah wine,with the single yeast fermentation of Saccharomyces cerevisiae as the control,the commercial Torulaspora delbrueckii,the indigenous Metschnikowia pulcherrima,and the indigenous Hanseniaspora uvarum were respectively inoculated with Saccharomyces cerevisiae in sequence,and the indigenous Metschnikowia pulcherrima and Hanseniaspora uvarum were respectively inoculated with Saccharomyces cerevisiae.The volatile aroma components of wine samples were determined by headspace solidphase microextraction and gas chromatography-mass spectrometry,and the basic physical and chemical indexes and sensory evaluation of the wine were evaluated.The results showed that compared with that by single yeast fermentation,the ethanol content of wine samples processed by mixed fermentation decreased by 2.5%-4.0%,while the glycerin content increased by 12.3%-15.3%,and the chroma increased by 3.6%-20.3%.In addition,the total amount of volatile aroma substances in wine samples processed by mixed fermentation increased by 2.7%-19.5%,of which the contents of aroma substances in the wine sample processed by mixed fermentation of the indigenous Metschnikowia pulcherrima and Saccharomyces cerevisiae(FM)were the most abundant,and the contents of isoamyl acetate,phenylethyl acetate,n-hexanol,and isobutanol significantly increased.The sensory evaluation results showed that the wine samples processed by FM had strong floral and fruit aromas,complex aromas,and good taste,and the overall score was the highest.

Key words:Syrah wine;non-Saccharomyces cerevisiae;mixed fermentation;aroma;sensory evaluation

DOI:10.12161/j.issn.1005-6521.2023.20.011

基金项目:怀来县科技支撑计划项目(2021C-05、2021C-07)

作者简介:邢家爱(1999—),女(汉),硕士研究生,研究方向:食品加工。

* 通信作者:王颉(1959—),男(汉),教授,博士,研究方向:果蔬加工;刘亚琼(1972—),女(汉),教授,博士,研究方向:果蔬加工。

引文格式:

邢家爱,于庆泉,李福东,等.混菌发酵对西拉葡萄酒香气品质的影响[J].食品研究与开发,2023,44(20):76-82.

XING Jiaai,YU Qingquan,LI Fudong,et al.Effect of Mixed Fermentation on Aroma Quality of Syrah Wine[J].Food Research and Development,2023,44(20):76-82.

加工编辑:王艳

收稿日期:2023-01-12