丹参提取物对去卵巢模型大鼠骨质疏松的影响

王玥1,陈薇2,杨志国3,张艳艳3,王浩2,徐咏全1,刘垚杰2,李丽维1,2*

(1.天士力研究院,天津 300410;2.天津科技大学食品科学与工程学院,天津 300457;3.天津天士力(辽宁)制药有限责任公司,辽宁阜新 123000)

摘 要:采用去卵巢大鼠模型,分别用丹参提取物低剂量、中剂量、高剂量和雌激素对模型鼠进行干预,探讨丹参提取物对雌激素缺乏引起的大鼠骨质疏松的影响。将SD 大鼠分为假手术组、模型组、丹参提取物低、中、高剂量组和雌激素组,分别连续给药12 周,测定子宫系数、股骨湿重、干重、灰重,并观察股骨、胫骨形态学的变化情况。结果显示:与假手术组比较,模型组动物体质量显著增加(P<0.01),子宫系数、股骨湿重、干重、灰重显著降低(P<0.05),股骨、胫骨骨小梁稀疏、断裂、排序紊乱;与模型组比较,丹参提物物各剂量组和雌激素组的体质量均显著降低(P<0.05),子宫系数、股骨湿重、干重及灰重均显著增加(P<0.05),股骨、胫骨的骨小梁结构得到不同程度的改善。综上,丹参提取物可提高去卵巢大鼠骨质量,改善骨微结构,且对子宫的影响小于雌激素,对去卵巢大鼠所致骨质疏松具有明显的改善作用。

关键词:丹参提取物;去卵巢大鼠;骨质量;骨形态学;骨质疏松

骨质疏松症(osteoporosis,OP)是一种以骨量降低及骨组织微结构破坏为特征,导致骨脆性增加的代谢性骨病[1],基本发病机制是成骨细胞与破骨细胞的功能失衡,骨吸收远大于骨形成,导致骨量丢失。近年来随着人均寿命的延长以及老龄人口的增加,骨质疏松的发病率也日益增高。传统中医理论认为骨质疏松,以肾虚为主,血瘀为害,互为因果,血瘀是骨质疏松症的促进因素,若气血两虚,则影响骨的营养及骨代谢[2],且现代研究也证实微血管改变是瘀血证的病理基础,瘀血是引起骨质疏松性骨痛的重要机制之一。

丹参为唇形科植物丹参(Salvia miltiorrhiza Bge.)的干燥根和根茎,性味苦,微寒,归心、肝经,具有活血祛瘀,通经止痛的功效[3],目前国内外关于丹参的辅助降血脂、提高耐缺氧、对化学性肝损伤有辅助保护和抗氧化等功能研究较多,而对其增加骨密度方面的功效研究较少。丹参作为活血化瘀的中药,能改善微循环,目前已有网络药理学研究表明丹参可通过多条通路直接或间接参与细胞分化和凋亡、氧化应激、炎症反应等影响骨代谢[4-5],在传统的中医药实践方面,中药材通常采用水提煎煮的方式进行,丹参的水溶性成分具有强抗氧化性,可起到预防动脉粥样硬化[6]、保护心血管[7]等作用,成为丹参提取物研究的主要热点之一。近年来,研究发现丹参水溶性成分可通过促进成骨细胞增殖、分化和表达[8-9]、促进骨胶原合成[10]、促进骨钙素生成[11]来促进骨形成,亦可通过抑制抗酒石酸酸性磷酸酶活性[12]、抑制核因子κB(nuclear factor kappa-B,NF-κB)信号通路[13]、抑制肿瘤坏死因子-α 的表达[14]来抑制骨吸收[15],还能通过调节骨髓微循环[16]、调节脂质代谢[17]等调节骨代谢。前期已有学者采用去卵巢模型研究丹参水提物对牙槽骨的影响[18-19],取得了积极的结果。本研究以丹参水提物为研究对象,采用去卵巢大鼠为模型,通过观察股骨质量、股骨及胫骨骨小梁形态学变化,探讨丹参提取物对骨代谢的影响,以期为丹参用于开发增加骨密度的功能性食品提供科学依据。

1 材料与方法

1.1 材料、试剂与仪器

基础饲料、实验大鼠:斯贝福(北京)生物技术有限公司[许可证号为SCXK(京)2016-0002];水合氯醛(>99%):上海麦克林生化科技有限公司;乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)脱钙液、β-雌二醇:北京索莱宝生物科技有限公司;青霉素:华北制药厂;丹参:市售。

FA2004 型分析天平:METTLER TOLEDO 公司;TDL-8002 恒温水浴锅:天津市中环实验电炉有限公司;SX-2-8-12 马弗炉:沈阳长白电炉厂;Olympus CKX41显微镜:日本奥林巴斯株式会。

1.2 提取物制备

丹参提取物制备方法:称取丹参(符合2020 版《中华人民共和国药典》一部标准),采用水提方式提取,工艺为料液比1 ∶8(kg/L),提取3 次,过滤,合并提取液,浓缩,干燥制得丹参提取物,每克丹参提取物相当于丹参生药2.86 g。

1.3 实验动物的选择

实验选用健康雌性3月龄SPF 级SD 大鼠,体质量250~300 g,饲养于天津科技大学实验动物中心。饲养环境:(23±3)℃,相对湿度55%~75%,12 h 明暗循环。大鼠被放置在白色塑料笼中,每笼4 只,每组2 笼。实验期间为动物提供充足的食物和水。本研究的所有实验程序均按照天津科技大学动物实验伦理委员会批准的方案进行。

1.4 分组与模型的建立

将SD 大鼠随机分为6 组,每组8 只,分别为假手术组(sham operation,SHA)、模型组(model,MOD)、丹参提取物低剂量组(Salvia miltiorrhiza extract low-dose,SL)、丹参提取物中剂量组(Salvia miltiorrhiza extract medium-dose,SM)、丹参提取物高剂量组(Salvia miltiorrhiza extract high-dose,SH)、雌激素组(estrogen,E2)。大鼠适应性喂养1 周之后进行建模,向大鼠腹腔注射10%水合氯醛溶液,腹部固定于鼠板上,于肋缘与脊柱交界处向下备皮,在离脊柱约1 cm 处切开皮肤,剥开肌肉组织,用止血钳拉出游离的脂肪组织,找到粉红色的卵巢,在其与子宫连接处用3 号线结扎,剪去卵巢组织,止血,并向腹腔内滴入青霉素注射液,再做肌层、皮肤的缝合。假手术组仅摘除卵巢附近的脂肪组织。各组大鼠单笼饲养,术后3 d 腹腔注射青霉素注射液,术后1 周进行阴道图片检查,确认卵巢完全摘除,卵巢摘除不完全者弃用。实验模型建立并恢复1 周后开始给药。根据前期预实验结果,假手术组和模型组每天灌胃等量的生理盐水,SL、SM、SH 组每天分别灌胃63、83 mg/kg 和107 mg/kg 的丹参提取物,雌激素组每天灌胃1 mg/kg β-雌二醇。各实验组连续给药12 周。

1.5 体质量和摄食量记录

体质量及摄食量自给药开始后进行记录,其体质量每周称量1 次,共计12 周,摄食量每天测量1 次并记录。观察各组摄食量与给药前后体质量的变化。

1.6 子宫系数测定

大鼠处死前12 h 进行断水断粮,处死后,将大鼠子宫上附着的脂肪剥离干净,吸取多余液体后称量子宫质量,计算子宫系数,观察各组子宫系数的变化,计算公式如下。

X=U/W×1 000

式中:X 为子宫系数,g/kg;U 为子宫质量,g;W 为大鼠体质量,g。

1.7 股骨计量学指标

股骨湿重:剥离大鼠右侧股骨,将附着的肌肉和筋膜剔除干净,吸取多余液体后用天平进行称量。

股骨干重:将剥离的大鼠右侧股骨脱脂72 h,随后在100 ℃环境中烘干8 h,并置于干燥器中放置30 min后进行称量。

股骨灰重:取烘干后的股骨,放入550 ℃马弗炉中8 h,取出后置于干燥器中冷却,精密称定股骨的灰重。

1.8 形态学观察

参照赵恒侠等[20]的研究方法,分别取大鼠左侧胫骨、股骨,除净周围附着的肌肉和筋膜组织,然后将骨组织置于10%福尔马林溶液中固定,EDTA 脱钙预处理后进行脱水、透明、包埋、切片、脱蜡、苏木素-伊红(hematoxylin-eosin staining,HE)染色、封片等步骤,分别获得大鼠股骨和胫骨切片。最后,通过光学显微镜采集图片,观察胫骨和股骨的骨小梁损伤程度。

1.9 统计学分析

本实验统计方法采用SPSS 22.0 软件进行统计学处理,结果均以平均值±标准差表示,采用单因素方差分析(analysis of variance,ANOVA)评估各组间差异,P<0.05 为差异有统计学意义。

2 结果与分析

2.1 体质量与摄食量

各组大鼠体质量自开始给药时进行记录,各组结果见表1。

表1 各组大鼠给药前后体质量及摄食量
Table 1 Body weight and food intake of rats in each group g

注:## 表示与SHA 组比较具有极显著性差异(P<0.01);* 表示与MOD 组比较具有显著性差异(P<0.05)。

分组初始体质量最终体质量平均摄食量SHA262.75±32.14336.52±29.4125.67±3.23 MOD266.30±33.12 415.41±25.69##26.78±2.58 SL264.33±32.89385.69±28.61*25.69±2.96 SM266.38±25.22382.31±20.91*27.69±2.44 SH258.63±26.30378.83±31.03*26.33±2.12 E2258.49±34.26372.31±34.07*26.88±3.31

如表1所示,初始体质量各组间没有显著差异(P>0.05),平均摄食量各组间无统计学差异(P>0.05)。12周后体质量与SHA 组比较,MOD 组体质量极显著增加(P<0.01),较SHA 组增加23.45%。与MOD 组比较,SL、SM、SH 与E2 组体质量均显著降低(P<0.05),较模型组分别降低了7.98%、8.58%、9.57%、10.38%,说明丹参提取物能抑制去卵巢大鼠体质量的增加。

2.2 子宫系数

各给药组对去卵巢大鼠子宫系数的影响结果如图1所示。

图1 不同受试物对去卵巢大鼠子宫系数的影响
Fig.1 Effects of different drugs on uterine coefficients of ovariectomized rats

不同小写字母表示具有显著性差异(P<0.05)。

由图1 可知,SHA、MOD、SL、SM、SH、E2 组的子宫系数分别为2.15、0.93、1.42、1.78、2.06、2.73 g/kg。与SHA 组比较,MOD、SL、SM 组的子宫系数显著降低(P<0.05),较假手术组分别降低了57.02%、33.94%、17.25%,E2 组较假手术组显著升高了26.50%(P<0.05),SH 组与SHA 组无显著差异(P>0.05)。与MOD 组比较,SL、SM、SH 组和E2 组子宫系数均显著升高(P<0.05),分别升高了18.24%、60.19%、63.73%和194.29%,且观察到丹参提取物给药剂量与子宫系数的增加呈正相关。与E2 组比较,丹参提取物各剂量组均显著降低(P<0.05)。综上,丹参提取物各剂量组均可改善去卵巢大鼠的子宫系数,并且对子宫的刺激作用明显小于雌激素,而雌激素对子宫有明显的刺激作用。

2.3 股骨计量学指标

各给药组对股骨湿重、股骨干重和股骨灰重的影响结果如图2所示。

图2 不同受试物对去卵巢大鼠股骨湿重、干重和灰重的影响
Fig.2 Effects of different drugs on the wet weight,dry weight,and ash weight of femur in ovariectomized rats

A.股骨湿重;B.股骨干重;C.股骨灰重。不同小写字母表示具有显著性差异(P<0.05)。

由图2A 可知,SHA、MOD、SL、SM、SH、E2 组的股骨湿重分别为1.22、1.02、1.10、1.15、1.16、1.24 g。与SHA组比较,MOD、SL 组股骨湿重显著降低(P<0.05),分别降低了15.91%、9.65%,SM、SH 组和E2 组均无显著差异(P>0.05)。与MOD 组比较,SL、SM、SH 组和E2 组的股骨湿重均显著升高(P<0.05),分别升高了7.45%、12.45%、13.31%和20.76%,且随着丹参提取物剂量增加,股骨湿重也逐渐增加。与E2 组比较,SM、SH 组无显著差异(P>0.05),表明丹参提取物中、高剂量对股骨湿重的增加与雌激素相当,且接近SHA 组。

由图2B 可知,SHA、MOD、SL、SM、SH、E2 各组的股骨干重分别为0.72、0.52、0.62、0.66、0.64、0.69 g,与SHA组比较,MOD、SL、SH 组的股骨干重显著降低(P<0.05),较SHA 分别降低27.97%、13.29%、10.31%,SM 和E2组均无显著差异(P>0.05)。与MOD 组相比,各给药组的股骨干重均显著升高(P<0.05),SL、SM、SH 和E2组的股骨干重较MOD 组分别升高20.38%、27.91%、24.51%和33.50%。与E2 组比较,SL、SM、SH 组均无显著差异(P>0.05),表明丹参提取物各剂量组对股骨干重的增加效果与雌激素相当。

由图2C 可知,SHA、MOD、SL、SM、SH、E2 各组的股骨灰重分别为0.43、0.31、0.36、0.37、0.39、0.42 g。与SHA 组比较,MOD、SL、SM 和SH 组的股骨灰重均显著降低(P<0.05),较SHA 组分别降低27.65%、15.59%、13.24%、8.24%,E2 组无显著差异(P>0.05)。与MOD 组相比,SL、SM、SH 和E2 组的股骨灰重均显著升高(P<0.05),各组灰重较MOD 组分别升高16.67%、19.92%、26.83%和35.37%,且丹参提取物给药剂量与股骨灰重的增加呈正相关(P<0.05)。与E2 组比较,SL、SM 组有显著差异(P<0.05),SH 组无显著差异(P>0.05)。

综上,丹参各组均可增加去卵巢大鼠股骨湿重、股骨干重和股骨灰重,丹参提取物中剂量组和高剂量组对股骨湿重的增加效果与雌激素相当,且已接近假手术组。

2.4 骨形态学观察

股骨形态学结果如图3所示,胫骨形态学结果如图4所示。

图3 不同受试物对去卵巢大鼠股骨形态学影响
Fig.3 Effects of different drugs on the morphology of femur in ovariectomized rats

图4 不同受试物对去卵巢大鼠胫骨形态学影响
Fig.4 Effects of different drugs on the morphology of tibia in ovariectomized rats

由图3 可知,SHA 组显示骨组织形态正常,股骨骨小梁密集,结构连接成网状,排列致密有序,粗细均匀,基本结构未见异常;MOD 组骨组织形态出现明显病理学改变,表现为骨小梁稀疏,断裂,排列紊乱,结构模糊,并可见游离末端;不同给药组股骨骨组织形态学变化较模型组均有明显改善,各给药组骨小梁无明显断裂,排列尚规则,且宽度接近正常,表明丹参各给药组和雌激素组均可以改善去卵巢大鼠股骨骨小梁结构。

由图4 可知,SHA 组显示骨组织形态正常,胫骨骨小梁密集,结构连接成网状,排列致密有序,粗细均匀,基本结构未见异常;MOD 组骨组织形态出现明显病理学改变,表现为骨小梁稀疏,断裂,排列紊乱,结构模糊,并可见游离末端;不同给药组胫骨骨组织形态学变化较模型组均有明显改善,可看出各给药组骨小梁无明显断裂,排列尚规则,且宽度接近正常,表明丹参各给药组和雌激素组均可以改善去卵巢大鼠胫骨骨小梁结构。

3 讨论与结论

去卵巢模型大鼠由于体内雌激素水平降低,骨代谢呈负平衡状态,骨吸收相对增强,骨量逐渐丢失,形成骨质疏松,去卵巢动物的体质量快速增长是为抵抗去卵巢后对骨骼影响的一种自身保护性反应,可以部分抑制模型大鼠的骨量丢失。股骨干重、湿重、灰重的降低,骨小梁的断裂,也直接反映了去卵巢模型骨量的丢失[21]。本研究发现,与去卵巢模型组大鼠比较,不同剂量的丹参提取物均能显著降低大鼠体质量、改善大鼠的子宫系数、增加股骨湿重、干重和灰重(P<0.05),并且能够改善股骨及胫骨骨小梁结构,此外,与假手术组比较,雌激素组的子宫系数显著增加(P<0.05),而前期也有研究表明长期使用雌激素对生殖系统造成损害[22],本研究结果也进一步印证了长期使用雌激素可对子宫会产生强刺激,从而导致诱发严重疾病的可能性,而丹参各组对子宫的影响要明显弱于雌激素组(P<0.05),这也就表明虽然丹参存在雌激素样作用,但对子宫的刺激明显减小。除了去卵巢动物模型外,丹参也对糖皮质激素模型引起的骨质疏松同样有效[23-24],说明丹参可对不同类型的骨质疏松起到增加骨密度的作用。综上所述,丹参提取物可提高去卵巢大鼠骨质量,改善骨微结构,且对子宫刺激作用小,对缓解骨质疏松具有积极作用,对股骨湿重的增加与雌激素相当且接近于假手术组,表明丹参提取物具有增加骨密度的功效。

参考文献:

[1] 马远征,王以朋,刘强,等.中国老年骨质疏松症诊疗指南(2018)[J].中国骨质疏松杂志,2018,24(12):1541-1567.MA Yuanzheng,WANG Yipeng,LIU Qiang,et al.2018 China guideline for diagnosis and treatment of senile osteoporosis[J].Chinese Journal of Osteoporosis,2018,24(12):1541-1567.

[2] 任之强,赵志强,晋大祥,等.骨质疏松症肾虚血瘀量化评分与性激素和血细胞参数关系研究[J].中国骨质疏松杂志,2015,21(5):560-563.REN Zhiqiang,ZHAO Zhiqiang,JIN Daxiang,et al.Relationship among quantitative evaluation of kidney deficiency and blood stasis,sexual hormones,and parameters of the blood cells in patients with osteoporosis[J].Chinese Journal of Osteoporosis,2015,21(5): 560-563.

[3] 国家药典委员会.中华人民共和国药典-一部:2020年版[M].北京:中国医药科技出版社,2020.Chinese Pharmacopoeia Commission.People's Republic of China(PRC)pharmacopoeia-part I:2020 edition[M].Beijing:China Medical Science Press and Technology Press of China,2020.

[4] 阎博昭,李刚,许波,等.丹参治疗股骨头坏死的分子机制研究[J].安徽中医药大学学报,2018,37(5):60-66.YAN Bozhao,LI Gang,XU Bo,et al.Molecular mechanism of Salvia miltiorrhiza in treatment of femoral head necrosis[J].Journal of Anhui University of Chinese Medicine,2018,37(5):60-66.

[5] 肖方骏,陈树东,栾继耀,等.丹参干预骨质疏松症: 网络药理学解释的作用机制[J].中国组织工程研究,2021,25(5):772-778.XIAO Fangjun,CHEN Shudong,LUAN Jiyao,et al.An insight into the mechanism of Salvia miltiorrhiza intervention on osteoporosis based on network pharmacology[J].Chinese Journal of Tissue Engineering Research,2021,25(5):772-778.

[6] 曾妮,许妹萍,庄丽明.丹参素对大鼠动脉粥样硬化的作用及其机制[J].免疫学杂志,2020,36(10):884-889,896.ZENG Ni,XU Meiping,ZHUANG Liming.The effect of Danshensu on atherosclerosis in rats and its mechanisms[J].Immunological Journal,2020,36(10):884-889,896.

[7] 张钰炜,张丹参,景永帅.丹参素对血管内皮细胞氧化损伤保护作用机制研究进展[J].中国药理学与毒理学杂志,2021,35(10):806.ZHANG Yuwei,ZHANG Danshen,JING Yongshuai.Research progress on protective mechanism of Danshensu on oxidative damage of vascular endothelial cells[J].Chinese Journal of Pharmacology and Toxicology,2021,35(10):806.

[8] 闫小飞,张富军,杜小娟,等.丹参素通过激活Wnt/β-catenin 通路促进大鼠原代成骨细胞的分化[J].西北药学杂志,2018,33(5):607-611.YAN Xiaofei,ZHANG Fujun,DU Xiaojuan,et al.Effects of tanshinol on osteogenic differentiation of primary cultured rat osteoblastic cells by activating Wnt/β-catenin pathway[J].Northwest Pharmaceutical Journal,2018,33(5):607-611.

[9] QIAO J T,LIU A Y,LIU J Y,et al.Salvianolic acid B(Sal B)alleviates the decreased activity induced by prednisolone acetate on osteoblasts by up-regulation of bone formation and differentiation genes[J].Food&Function,2019,10(9):6184-6192.

[10] 史炜镔,符诗聪,杜宁,等.丹参有效部位对骨折愈合过程中胶原基因表达的影响[J].中国中西医结合杂志,2000,20(4):269-271.SHI Weibin,FU Shicong,DU Ning,et al.Effect of effective fraction of Radix salviae miltiorrhizae on procollagen gene expression in fracture healing[J].Chinese Journal of Integrated Traditional and Western Medicine,2000,20(4):269-271.

[11] 张晓,张国庆,顾伯林,等.丹参对人成骨细胞骨钙素生成及钙离子浓度的影响[J].世界科学技术-中医药现代化,2013,15(2):274-277.ZHANG Xiao,ZHANG Guoqing,GU Bolin,et al.Effects of Salvia miltiorrhiza on production of osteocalcin and concentration of calcium ion in human osteoblasts[J].Modernization of Traditional Chinese Medicine and Materia Materia-World Science and Technology,2013,15(2):274-277.

[12] LUO S Y,YANG Y J,CHEN J F,et al.Tanshinol stimulates bone formation and attenuates dexamethasone-induced inhibition of osteogenesis in larval zebrafish[J].Journal of Orthopaedic Translation,2016,4:35-45.

[13] HAN J F,WANG W.Effects of tanshinol on markers of bone turnover in ovariectomized rats and osteoblast cultures[J].PLoS One,2017,12(7):e0181175

[14] 尹纪伟,赵福涛,王艳玲,等.骨髓间充质干细胞移植对胶原诱导性关节炎滑膜增殖的影响及机制[J].中华临床医师杂志(电子版),2011,5(13):3828-3833.YIN Jiwei,ZHAO Futao,WANG Yanling,et al.Effect of mesenchymal stem cells transplantation on the proliferation of synovinm in rats with collagen Ⅱinduced arthritis[J].Chinese Journal of Clinicians,2011,5(13):3828-33.

[15] 王丽丽,马如风,刘海霞,等.丹酚酸B 通过调节Nox4 信号通路改善高脂饮食小鼠骨代谢的实验研究[J].中国药理学通报,2018,34(1):77-81.WANG Lili,MA Rufeng,LIU Haixia,et al.Salvianolic acid B regulates bone metabolism through Nox4 pathway in HFD mice[J].Chinese Pharmacological Bulletin,2018,34(1):77-81.

[16] CHEN G H,ZHANG X L,LIN H,et al.Tanshinol alleviates osteoporosis and myopathy in glucocorticoid-treated rats[J].Planta Medica,2017,83(16):1264-1273.

[17] WANG N,LI Y K,LI Z Y,et al.Sal B targets TAZ to facilitate osteogenesis and reduce adipogenesis through MEK-ERK pathway[J].Journal of Cellular and Molecular Medicine,2019,23(5):3683-3695.

[18] 张晓燕,崔燎,吴铁,等.丹参对去卵巢大鼠牙槽骨代谢的影响[J].时珍国医国药,2011,22(6):1393-1394.ZHANG Xiaoyan,CUI Liao,WU Tie,et al.Effect of Salvia miltiorrhiza on alveolar bone metabolism in ovariectomized rats[J].Lishizhen Medicine and Materia Medica Research,2011,22(6):1393-1394.

[19] 张晓燕,崔燎,吴铁.丹参素防治去卵巢大鼠牙槽骨骨量的丢失[J].口腔医学研究,2008,24(2):148-151.ZHANG Xiaoyan,CUI Liao,WU Tie.Tanshinol prevents alveoar bone loss induced by ovariectomy in rats[J].Journal of Oral Science Research,2008,24(2):148-151.

[20] 赵恒侠,周道成,陈叶.从Wnt/β-catenin 通路研究滋肾降糖丸对糖尿病大鼠骨质疏松的防治作用[J].广州中医药大学学报,2018,35(6):1051-1057.ZHAO Hengxia,ZHOU Daocheng,CHEN Ye.Preventive and therapeutic effects of zishen Jiangtang pills on diabetes mellitus rats complicated with osteoporosis through Wnt/β-catenin pathway[J].Journal of Guangzhou University of Traditional Chinese Medicine,2018,35(6):1051-1057.

[21] 姚荣成,谢宇,张悦,等.JGYS 对大鼠去卵巢高转换型骨质疏松症的影响[J].昆明医科大学学报,2015,36(1):4-11.YAO Rongcheng,XIE Yu,ZHANG Yue,et al.Effect of JGYS on ovariectomy-induced rat high-turnover osteoporosis[J].Journal of Kunming Medical University,2015,36(1):4-11.

[22] 庞晓奡,张瑶,张淑兰.绝经激素治疗与有关疾病的风险评估[J].中国计划生育和妇产科,2022,14(1):13-17.PANG Xiao'ao,ZHANG Yao,ZHANG Shulan.Menopausal hormone therapy and risk assessment for related disorders[J].Chinese Journal of Family Planning&Gynecotokology,2022,14(1):13-17.

[23] YANG Y J,SU Y J,WANG D T,et al.Tanshinol rescues the impaired bone formation elicited by glucocorticoid involved in KLF15 pathway[J].Oxidative Medicine and Cellular Longevity,2016,2016:1092746.

[24] 王秉义,潘剑.丹参素拮抗氧化应激所致骨质疏松并通过PI3k/Akt 通路减少成骨细胞的凋亡[J].中国骨质疏松杂志,2017,23(1):1-5,11.WANG Bingyi,PAN Jian.Tanshinol attenuates oxidative stress-induced osteoporosis and reduces apoptosis of osteoblasts via PI3k/Akt signal pathway[J].Chinese Journal of Osteoporosis,2017,23(1): 1-5,11.

Effect of Salvia miltiorrhiza Extract in Treatment of Osteoporosis Caused by Ovariectomy in Rats

WANG Yue1,CHEN Wei2,YANG Zhiguo3,ZHANG Yanyan3,WANG Hao2,XU Yongquan1,LIU Yaojie2,LI Liwei1,2*
(1.Tasly Academy,Tianjin 300410,China;2.College of Food Science and Technology,Tianjin University of Science&Technology,Tianjin 300457,China;3.Tianjin Tasly(Liaoning)Pharmaceutical Co.,Ltd.,Fuxin 123000,Liaoning,China)

Abstract:The ovariectomized model rats were intervened with estrogen and low-,medium-,and high-dose Salvia miltiorrhiza extract,respectively,and the effect of the extract on osteoporosis caused by estrogen deficiency in rats was studied.The SD rats were assigned into six groups:a sham operation group,a model group,low-,medium-,and high-dose S.miltiorrhiza extract groups,and an estrogen group.After 12 weeks of continuous administration,the uterine coefficient,as well as the wet weight,dry weight,and ash weight of femur,was measured,and the morphological changes of femur and tibia were observed.The results showed that compared with the sham operation group,the ovariectomy increased the body weight(P<0.01),decreased the uterine coefficient and the wet weight,dry weight,and ash weight of femur(P<0.05),and caused the loosening,fracture,and disordered arrangement of trabeculae in the femur and tibia.Compared with the model group,S.miltiorrhiza extract and estrogen decreased the body weight(P<0.05),increased the uterine coefficient and the wet weight,dry weight,and ash weight of femur(P<0.05),and recovered the trabecular structure of the femur and tibia to varying degrees.In summary,S.miltiorrhiza extract could improve bone mass and microstructure in ovariectomized rats and had slighter effect on the uterus than estrogen,demonstrating significant role in alleviating the osteoporosis induced by ovariectomy in rats.

Key words:Salvia miltiorrhiza extract;ovariectomized rat;bone mass;bone histomorphometry;osteoporosis

DOI:10.12161/j.issn.1005-6521.2023.19.012

作者简介:王玥(1985—),女(汉),高级工程师,硕士研究生,研究方向:功能食品开发。

*通信作者:李丽维,高级工程师,博士研究生。

引文格式:王玥,陈薇,杨志国,等.丹参提取物对去卵巢模型大鼠骨质疏松的影响[J].食品研究与开发,2023,44(19):80-85.

WANG Yue,CHEN Wei,YANG Zhiguo,et al.Effect of Salvia miltiorrhiza Extract in Treatment of Osteoporosis Caused by Ovariectomy in Rats[J].Food Research and Development,2023,44(19):80-85.

加工编辑:王艳

收稿日期:2022-06-06