响应面优化提取山茱萸籽油及其对游泳运动大鼠生理生化指标的影响

贡新烨,蔡协清

(南京工业大学,江苏 南京 211816)

摘 要:采用响应面优化微波辅助溶剂法提取制备山茱萸籽油,并研究其对游泳运动大鼠生理生化变化的干预作用。山茱萸籽油的最佳提取条件为:液料比11∶1(mL/g)、提取温度41℃、微波功率400 W,此条件下山茱萸籽油得率为31.25%。大鼠游泳运动实验表明,灌胃山茱萸籽油的实验组大鼠游泳后与对照组大鼠游泳后相比,血糖、甘油三酯、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)水平呈升高趋势,血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)、肌酸激酶(creatine kinase,CK)、谷草转氨酶[glutamic-oxal(o)acetic transaminase,GOT]、谷丙转氨酶(glutamic-pyruvic transaminase,GPT)水平呈降低趋势,表明山茱萸籽油可以起到对大鼠生理生化指标的干预作用,并且可以延长游泳时间,提高大鼠的耐力,缓解疲劳。

关键词:山茱萸籽油;响应面法;生理生化指标;游泳运动;大鼠

山茱萸属于山茱萸科山茱萸属植物,在我国有着悠久的种植历史[1],主产于山西、陕西、山东、江苏、浙江等省份[2]。山茱萸作为我国名贵木本药材之一,通常以干燥成熟果肉入药,其富含多种营养成分[3],包括碳水化合物、维生素C,柠檬酸、黄酮类化合物、熊果苷等成分。山茱萸籽约占整个果实质量的80%,是其果肉药物化利用后的主要废弃部分[4-5]。因此,对山茱萸籽资源的研究有利于提高山茱萸的综合利用价值。

山茱萸籽油中富含多种不饱和脂肪酸,其中油酸含量大约为35.8%,亚油酸含量大约为34.6%[6]。摄入不饱和脂肪酸对于人体的健康有至关重要的作用,其中亚油酸是人体自身无法合成的必需脂肪酸,主要的功能是软化血管,并在新陈代谢过程中起着重要的作用,亚油酸可以降低机体的血脂血压,起到预防动脉粥样硬化和心脑血管疾病等功效[7]。另外,山茱萸籽油中还含有多酚类成分,其具有较强的抗氧化活性,对自由基有较好的清除作用。鉴于山茱萸籽油具有良好的利用价值,本文将采用微波辅助溶剂法来制备山茱萸籽油,并研究其对游泳运动大鼠生理生化指标变化的干预影响。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

山茱萸籽:定远县琪荣农林种养经营部;石油醚(30℃~60℃)、无水乙醇、正己烷、丙酮(分析纯):天津市科密欧化学试剂有限公司;血糖试剂盒、甘油三酯试剂盒、血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)试剂盒、丙二醛(malondialdehyde,MDA)试剂盒、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)试剂盒、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)试剂盒、肌酸激酶(creatine kinase,CK)试剂盒、谷草转氨酶[glutamic-oxal(o)acetic transaminase,GOT]试剂盒、谷丙转氨酶(glutamic-pyruvic transaminase,GPT)试剂盒:南京建成生物工程所。

SPF 级雄性 SD 大鼠:40只,体重在(150±5)g,浙江普康生物技术股份有限公司,SYXK(浙)2019-0032。

1.2 仪器与设备

XL-500型粉碎机:南京耀天干燥设备有限公司;MKX-E1A型微波萃取仪:青岛迈威微波化学设备有限公司;J-SKY型分析天平:巨鼎天衡(苏州)称重设备有限公司;DHG-9055A型鼓风干燥机:金坛区金城致杰实验仪器厂;TG16-WS型高速离心机:常州金坛良友仪器有限公司;HH-s6型恒温水浴锅:济南欧莱博科学仪器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 山茱萸籽油的提取

提取工艺流程如下[9-10]

挑选山茱萸籽→干燥→粉碎→加入提取溶剂→微波辅助→减压蒸馏→干燥至恒重

挑选无虫蛀山茱萸籽,45℃干燥3 h,去除水分,粉碎至60目,得到山茱萸籽粉末。称取适量的山茱萸籽粉末,放置于锥形瓶中,加入一定液料比的提取溶剂,放置于微波萃取仪中,在不同的微波功率、提取温度、提取时间下进行提取,提取结束后,蒸馏出溶剂,并在45℃下干燥至恒重得到山茱萸籽油。

Y/%=(M1-M2/m)×100

式中:Y为山茱萸籽油得率,%;M1为山茱萸籽油质量,g;M2为锥形瓶质量,g;m为山茱萸籽粉末质量,g。

1.3.2 单因素试验

固定提取温度40℃、提取时间50 min、微波功率300 W,设定不同液料比 4∶1、6∶1、8∶1、10∶1、12∶1(mL/g);固定提取时间 50 min、微波功率 300 W、液料比 8∶1(mL/g),设定不同提取温度 30、35、40、45、50℃;固定提取温度40℃、液料比8∶1(mL/g)、微波功率300 W,设定不同提取时间 30、40、50、60、70 min;固定提取温度40℃、液料比8∶1(mL/g)、提取时间50 min,设定不同微波功率 100、200、300、400、500 W,研究各因素对山茱萸籽油得率的影响。

1.3.3 动物分组及运动方案

选取SPF级雄性SD大鼠40只,体重(150±5)g,大鼠分笼饲养,饲养温度(23±2)℃。随机分成2组,每组20只大鼠,分成对照组、实验组。大鼠空腹过夜后,将大鼠放入到游泳池内,大鼠的尾部负重其体重5%的铅丝,从大鼠进入到游泳池开始,到大鼠力竭(头部沉入水中8 s不能浮出)的这段周期记为游泳时间[11]。实验组游泳前,20只大鼠灌胃10 mg/g山茱萸籽油,游泳力竭后,20只大鼠再次灌胃10 mg/g山茱萸籽油(灌胃剂量参照程耀明的小鼠实验方法并加以改进[12]);对照组20只大鼠游泳前后各灌胃蒸馏水10mg/g,试验时间持续6周。游泳前和游泳2 h后,采取眼眶血,离心取血浆,并对血糖、甘油三酯、血尿素氮(BUN)、丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、肌酸激酶(CK)、谷草转氨酶(GOT)、谷丙转氨酶(GPT)等指标根据试剂盒的说明书检测分析。

1.4 统计学分析

本文使用SPSS 18.0软件进行数据分析,数据均使用均值±标准差来表示,采取组间进行对比,P<0.05表示具有统计学意义。

2 结果与分析

2.1 提取溶剂对山茱萸籽油得率的影响

以山茱萸籽油得率为考察指标,考察4种提取溶剂对山茱萸籽油得率的影响,结果见图1。

图1 提取溶剂对山茱萸籽油得率的影响
Fig.1 Effect of extraction solvent on yield of Cornus officinalis seed oil

从图1可知,正己烷相比于其它3种溶剂对山茱萸籽油得率的影响最大,所以选择正己烷作为提取溶剂进行后续试验[13]

2.2 单因素试验

2.2.1 液料比对山茱萸籽油得率的影响

液料比对山茱萸籽油得率的影响见图2。

图2 液料比对山茱萸籽油得率的影响
Fig.2 Effect of liquid to material ratio on the yield of Cornus officinalis seed oil

由图2可知,随着液料比的增加,山茱萸籽油得率逐渐提高,当液料比为10∶1(mL/g)时,得率达到最高。这是由于液料比的增加使得物料与溶剂之间接触更充分,有利于油脂的提取,继续增大液料比,会使得油脂与提取溶剂之间分离时间变长,成本上升,同时溶剂量增加会使得山茱萸籽内多余成分析出,影响得率[14],故选择液料比为 10∶1(mL/g)。

2.2.2 提取温度对山茱萸籽油得率的影响

提取温度对山茱萸籽油得率的影响见图3。

图3 提取温度对山茱萸籽油得率的影响
Fig.3 Effect of extraction temperature on yield of Cornus officinalis seed oil

由图3可知,随着提取温度的增加,山茱萸籽油得率逐渐升高,当提取温度升高到40℃时,得率达到最高,继续提高温度,得率出现降低趋势。这是因为温度的升高,使得油脂易析出到溶剂中,而温度过高会导致溶剂挥发,造成得率降低[15],故选择提取温度为40℃。

2.2.3 提取时间对山茱萸籽油得率的影响

提取时间对山茱萸籽油得率的影响见图4。

图4 提取时间对山茱萸籽油得率的影响
Fig.4 Effect of extraction time on yield of Cornus officinalis seed oil

由图4可知,随着提取时间的增加,山茱萸籽油得率逐渐升高,在提取时间为60 min时达到最高,继续延长时间,得率不再升高。因此,选择提取时间为60min。

2.2.4 微波功率对山茱萸籽油得率的影响

微波功率对山茱萸籽油得率的影响见图5。

由图5可知,随着微波功率的加强,山茱萸籽油得率逐渐升高,在微波功率为400 W时达到最高,继续加强微波功率,得率出现降低趋势。微波功率的加强,可以使山茱萸籽内的细胞破碎速度加快,进而使油脂更容易析出到溶剂中,继续增加微波功率会使得溶剂挥发加剧,导致溶剂流失,得率降低[16]。因此,选择微波功率为400 W。

图5 微波功率对山茱萸籽油得率的影响
Fig.5 Effect of microwave power on yield of Cornus officinalis seed oil

2.3 响应面法试验结果与分析

在单因素试验的基础上,以山茱萸籽油得率(Y)为指标,选择液料比(X1)、提取温度(X2)、微波功率(X3)为因素,进行三因素三水平响应面试验设计,试验因素与水平见表1。

表1 Box-Behnken试验设计因素水平
Table 1 Box Behnken design factor level

水平X1液料比/(mL/g)X2提取温度/℃X3微波功率/W-1 8∶1 35 300 0 10∶1 40 400 1 12∶1 45 500

响应面分析方案与结果见表2,方差分析见表3。

表2 Box-Behnken试验设计与结果
Table 2 Box Behnken experimental design and results

序号 X1 X2 X3 Y/%1-1 -1 0 28.31 2 0 0 0 31.12 3-1 0 29.06 4 0 0 0 31.26 1 5 0 30.24 6-1 0 -1 27.85 7 0 0 0 31.10 1 1 8-1 1 28.35 9 1 0 1 29.14 0 10 0 1 -1 29.46 11 0 1 1 29.04 12 -1 1 0 29.21 13 -1 0 1 28.48 14 0 -1 -1 27.55 15 0 0 0 31.20 16 0 0 0 31.23 17 1 0 -1 29.15

利用Design-Expert软件对表3试验数据进行分析,得到微波辅助溶剂法提取山茱萸籽油的多元回归方程:Y=31.18+0.47X1+0.59X2+0.13X3+0.070X1X2-0.16X1X3-0.31X2X3-0.96X12-1.02X22-1.57X32

由表3可知,模型P<0.01(极显著),失拟项P值为0.150 5(不显著),因变量与所有自变量之间的线性关系显著R2=0.997 5,R2Adj=0.994 3,说明该方程的拟合度较好,表明回归模型达到极显著,可以反映得率和各因素之间的关系,试验误差小,试验预测数据具有良好的可靠性,故可以用该模型对山茱萸籽油的提取试验进行预测和分析。

表3 响应面回归模型ANOVA分析结果
Table 3 ANOVA analysis results of response surface regression model

注:*表示有显著差异(P<0.05);**表示有极显著差异(P<0.01)。

方差来源 平方和 自由度 均方 F值 P值 显著性模型 25.69 9 2.85 310.62 <0.000 1 **X1 1.75 1 1.75 190.26 <0.000 1 **X2 2.74 1 2.74 297.91 <0.000 1 **X3 0.13 1 0.13 13.60 0.007 8 **X1X2 0.020 1 0.020 2.13 0.187 6 X1X3 0.10 1 0.10 11.14 0.012 5 *X2X3 0.37 1 0.37 40.49 0.000 4 **X12 3.89 1 3.89 423.12 <0.000 1 **X22 4.35 1 4.35 472.94 <0.000 1 **X32 10.33 1 10.33 1 123.58 <0.000 1 **残差 0.064 7 9.19×10-3失拟项 0.045 3 0.015 3.12 0.150 5纯误差 0.019 4 4.82×10-3总和 25.76 16

从各个因素的显著性水平差异可知,液料比、提取温度、微波功率影响为极显著,对山茱萸籽油得率影响顺序为,提取温度>液料比>微波功率,X1X3达到显著水平(P<0.05)、X2X3达到极显著水平(P<0.01),并且各个因素的二次项对山茱萸籽油得率的影响均达到了极显著水平(P<0.01)。

试验得出山茱萸籽油最佳提取条件为:液料比10.51∶1(mL/g)、提取温度41.49℃、微波功率 399.79W,在此条件下山茱萸籽油的得率为31.33%。根据试验的可操作性,将试验条件调整为液料比11∶1(mL/g)、提取温度41℃、微波功率400 W,进行3次验证试验,得出山茱萸籽油平均得率为31.25%,与预测值相近。因此,响应面法优化得到的山茱萸籽油工艺条件准确可靠。

2.4 山茱萸籽油对游泳运动大鼠游泳时间的影响

山茱萸籽油对游泳运动大鼠游泳时间的影响见图6。

由图6可知,实验组大鼠游泳时间显著大于对照组大鼠,表明山茱萸籽油具有明显的延长游泳时间的作用,能够提高大鼠的耐力,缓解疲劳[17]

图6 山茱萸籽油对游泳运动大鼠游泳时间的影响
Fig.6 Effect of Cornus officinalis seed oil on swimming time of swimming rats

2.5 山茱萸籽油对游泳运动大鼠血液生理生化指标变化的干预影响

山茱萸籽油对游泳运动大鼠血液生理生化指标变化的干预影响见表4。

表4 山茱萸籽油对游泳运动大鼠血液生理生化指标变化的干预影响
Table 4 Intervention effect of Cornus officinalis seed oil on blood physiological and biochemical index changes of swimming rats

注:试验组与对照组相比,#表示有显著差异(P<0.05);游泳前后相比,*表示有显著差异(P<0.05)。

项目 血糖/(mmol/L)游泳前 对照组 6.12±0.71实验组 6.61±0.82游泳后 对照组 4.11±0.36*实验组 5.24±0.41#*甘油三脂/(mmol/L)1.24±0.31 1.05±0.24 0.53±0.11*0.87±0.15#*BUN/(mmol/L)4.82±0.65 4.67±0.55 7.82±1.31*5.88±1.25#*MDA/(mmol/L)4.74±0.52 4.15±0.43 8.05±0.91*6.42±0.57#*CK/(U/L)GOT/(U/L)GPT/(U/L)GSH-Px/(U/L)SOD/(U/L)312.45±22.65 152.36±16.22 55.31±4.26 189.65±15.23 114.26±12.66 353.64±31.61 149.23±15.95 58.26±4.58 195.36±16.01 118.74±12.91 605.41±51.23*342.21±31.26*105.68±7.69*146.87±13.26* 87.64±8.65*556.74±45.28#*302.41±28.26#*99.36±6.54#*162.37±12.68#*101.36±9.44#*

从表4得出,游泳前2组大鼠各项指标均在正常范围内,没有显著性差异(P>0.05)。对照组大鼠游泳后血糖、甘油三酯、GSH-Px、SOD水平明显下降(P<0.05),对照组大鼠游泳后 BUN、MDA、CK、GOT、GPT水平明显升高(P<0.05),实验组大鼠游泳后与对照组大鼠游泳后相比,血糖、甘油三酯、GSH-Px、SOD水平呈升高趋势(P<0.05),BUN、MDA、CK、GOT、GPT 水平呈降低趋势(P<0.05)。说明大鼠经过游泳力竭运动之后体内肝脏、肌肉等脏器组织代谢加快,代谢产物堆积,体内产生大量的自由基,这些机体内脂质过氧化反应的代谢产物对细胞具有严重的损伤作用[18-20]。而游泳后实验组大鼠经过灌胃山茱萸籽油,各项指标均明显优于灌胃蒸馏水的对照组,山茱萸籽油由于含有多酚类成分,其具有较强的抗氧化活性,对自由基有较好的清除作用,同时山茱萸籽油中富含多种不饱和脂肪酸,可以起到促进体内脂肪分解的作用,并且可以降低机体的血脂,起到对大鼠生理生化指标变化的干预作用。

3 结论

采用微波辅助溶剂法提取制备山茱萸籽油,得出最佳提取条件为:液料比11∶1(mL/g)、提取温度41℃、微波功率400 W。大鼠游泳运动实验表明,对照组大鼠游泳后血糖、甘油三酯、GSH-Px、SOD水平明显下降(P<0.05),对照组大鼠游泳后 BUN、MDA、CK、GOT、GPT水平明显升高(P<0.05),同时灌胃山茱萸籽油的实验组大鼠游泳后与对照组大鼠游泳后相比血糖、甘油三酯、GSH-Px、SOD 水平呈升高趋势(P<0.05),BUN、MDA、CK、GOT、GPT 水平呈显著降低趋势(P<0.05),试验组大鼠各项指标均明显优于灌胃蒸馏水的对照组,起到对大鼠生理生化指标变化的干预作用。另外,山茱萸籽油具有明显延长游泳时间的作用,提高大鼠的耐力,缓解疲劳。

参考文献:

[1]王韶君,王耀辉,李成海,等.不同产地山茱萸种子中油脂含量及脂肪酸组成分析[J].植物资源与环境学报,2016,25(3):112-114.WANG Shaojun,WANG Yaohui,LI Chenghai,et al.Analysis of oil content and fatty acid composition of Cornus officinalis seeds from different habitats[J].Journal of Plant Resources and Environment,2016,25(3):112-114.

[2]陈巧霞,杨光明,潘扬.山茱萸功能性成分的提取分离及生物活性研究进展[J].江苏中医药,2016,48(1):82-85.CHEN Qiaoxia,YANG Guangming,PAN Yang.Research progress on extraction,separation and bioactivity of f unctional components from Cornus officinalis[J].Jiangsu Traditional Chinese Medicine,2016,48(1):82-85.

[3]李芳丽,毕月玲.山茱萸的药理学研究进展[J].医学信息,2011,24(9):5965-5967.LI Fangli,BI Yueling.Pharmacological research progress of Cornus officinalis[J].Medical Information,2011,24(9):5965-5967.

[4]白成科,李鹏毛,王喆之.山茱萸肉和种子脂溶性成分的GC-MS分析[J].食品科学,2007,28(11):493-496.BAI Chengke,LI Pengmao,WANG Zhezhi.GC-MS analysis of fat soluble components in Cornus officinalis[J].Food Science,2007,28(11):493-496.

[5]付欢欢,方从兵.山茱萸籽油的提取及其成分分析[J].合肥师范学院学报,2020,38(3):7-10.FU Huanhuan,FANG Congbing.Extraction and composition analysis of Cornus officinalis seed oil[J].Journal of Hefei Normal University,2020,38(3):7-10.

[6]周力,郭雄,何东平.超临界CO2法提取山茱萸籽油工艺的研究[J].粮食与油脂,2016,29(7):50-54.ZHOU Li,GUO Xiong,HE Dongping.Study on supercritical CO2 extraction of Cornus officinalis seed oil[J].Food and Oil,2016,29(7):50-54.

[7]申思洋,苌建峰,柴逸飞,等.红花籽油和紫苏籽油不同配比降血脂作用研究[J].中国油脂,2020,45(2):106-110.SHEN Siyang,JIAN Jianfeng,CHAI Yifei,et al.The effect of different ratio of safflower oil and perilla seed oil on reducing blood lipids[J].China Oils and Fats,2020,45(2):106-110.

[8]李晓明,姜华,李军,等.山茱萸籽中多酚的抗氧化活性研究[J].时珍国医国药,2012,23(4):902-903.LI Xiaoming,JIANG Hua,LI Jun,et al.Antioxidant activity of polyphenols from Cornus officinalis seeds[J].Lishizhen Medicine and Materia Medica Research,2012,23(4):902-903.

[9]杜超,张雄,成刚.微波辅助提取猕猴桃籽油的工艺[J].食品工业,2020,41(6):152-154.DU Chao,ZHANG Xiong,CHENG Gang.Microwave assisted extraction of kiwifruit seed oil[J].Food Industry,2020,41(6):152-154.

[10]仵缘,蒋丹,包瑛.微波辅助溶剂法提取橡胶籽油工艺[J].食品与发酵工业,2015,41(7):244-250.YU Yuan,JIANG Dan,BAO Ying.Microwave assisted solvent extraction of rubber seed oil[J].Food and Fermentation Industry,2015,41(7):244-250.

[11]郝利民,郭长江,何锦风.一种抗疲劳泡腾饮料对游泳大鼠生理生化变化的干预作用[J].食品与发酵工业,2002,28(7):50-52.HAO Limin,GUO Changjiang,HE Jinfeng.Intervention effect of an anti fatigue effervescent beverage on physiological and biochemical changes of swimming rats[J].Food and Fermentation Industry,2002,28(7):50-52.

[12]程耀明.姜黄提取物对运动小鼠生理疲劳和生理机能的影响[J].基因组学与应用生物学,2019,38(12):5738-5743.CHENG Yaoming.Effects of turmeric extract on physiological fatigue and physiological function of exercise mice[J].Genomics and Applied Biology,2019,38(12):5738-5743.

[13]王帅夫.树莓籽油的提取精炼工艺及加热稳定性的研究[D].沈阳:沈阳农业大学,2018.WANG Shuaifu.Study on Extraction and refining technology and heating stability of raspberry seed oil[D].Shenyang:Shenyang Agricultural University,2018.

[14]张丽红,谢三都,沈萃.微波技术辅助紫苏叶多糖提取工艺优化[J].中国农学通报,2014,30(15):305-309.ZHANG Lihong,XIE Sandu,SHEN Cui.Optimization of microwave assisted extraction of perilla leaf polysaccharide[J].Chinese Agronomy Bulletin,2014,30(15):305-309.

[15]赵鹤鹏,刘佳南.响应面法优化微波辅助提取沙棘籽油的工艺研究[J].吉林化工学院学报,2019,36(11):17-21.ZHAO Hepeng,LIU Jianan.Optimization of microwave assisted extraction of seabuckthorn seed oil by response surface methodology[J].Journal of Jilin University of Chemical Technology,2019,36(11):17-21.

[16]岳金霞,彭丹,徐晓辉.响应面法优化微波辅助提取奇亚籽油工艺[J].河南工业大学学报(自然科学版),2018,39(2):72-77.YUE Jinxia,PENG Dan,XU Xiaohui.Optimization of microwave assisted extraction of Qiya seed oil by response surface methodology[J].Journal of Henan University of Technology (Naturel Science Edition),2018,39(2):72-77.

[17]李国杰.刺五加籽乙醇提取物对小鼠抗运动疲劳作用的[J].中国油脂,2018,43(9):75-77.LI Guojie.Anti fatigue effect of Acanthopanax senticosus seed ethanol extract on mice[J].China Oil and Fats,2018,43(9):75-77.

[18]NOVELLO A A,DA CONCEICAO L L,MACIEL D S D M,et al.Chemical characterization,antioxidant and antiatherogenic activity of anthocyanin-rich extract from Euterpe edulis Mart.in mice[J].Journal of Food and Nutrition Research,2015,54(2):101-112.

[19]YOU L,ZHAO M,REGENSTEIN J M,et al.In vitro antioxidant activity and in vivo anti-fatigue effect of loach (Misgurnus anguillicaudatus)peptides prepared by papain digestion[J].Food Chem,2011,124(1):188-194.

[20]彭涛,李文平,张明军.黄芪多糖对力竭游泳小鼠生理生化指标的影响[J].中国畜牧兽医,2008,35(12):33-35.PENG Tao,LI Wenping,ZHANG Mingjun.Effects of astragalus polysaccharides on physiological and biochemical indexes of exhausted swimming mice[J].Chinese Animal Hhusbandry and Veterinary,2008,35(12):33-35.

Optimization of Extraction of Cornus officinalis Seed Oil by Response Surface Methodology and Its Influence on Physiological and Biochemical Indexes of Swimming Rats

GONG Xin-ye,CAI Xie-qing
(Nanjing University of Technology,Nanjing 211816,Jiangsu,China)

Abstract:Response surface methodology(RSM)was used to optimize the microwave-assisted solvent extraction of Cornus officinalis seed oil,and its intervention on physiological and biochemical changes of swimming rats was studied.The optimum extraction conditions of Cornus officinalis seed oil were as follows:liquid-solid ratio 11∶1(mL/g),extraction temperature 41 ℃,microwave power 400 W.Under these conditions,the yield of Cornus officinalis seed oil was 31.25%.The swimming exercise test showed that the levels of blood glucose,triglyceride,glutathione peroxidase(GSH-Px),superoxide dismutase (SOD)in the experimental group were higher than those in the control group,and the levels of blood urea nitrogen (BUN)and malondialdehyde(MDA),creatine kinase(CK),glutamic-oxal(o)acetic transaminase(GOT),and glutamic-pyruvic transaminase(GPT)were lower than those in the control group.The results showed that Cornus officinalis seed oil could intervene the physiological and biochemical indexes of rats,prolong the swimming time,improve the endurance of rats and relieve fatigue.

Key words:Cornus officinalis seed oil;response surface method;physiology and biochemistry indexes;swimming;rats

DOI:10.12161/j.issn.1005-6521.2021.10.013

基金项目:江苏省教育厅项目(2017SJB2036)

作者简介:贡新烨(1977—),女(汉),助教,硕士,研究方向:运动营养保健。

引文格式:

贡新烨,蔡协清.响应面优化提取山茱萸籽油及其对游泳运动大鼠生理生化指标的影响[J].食品研究与开发,2021,42(10):87-92.

GONG Xinye,CAI Xieqing.Optimization of Extraction of Cornus officinalis Seed Oil by Response Surface Methodology and Its Influence on Physiological and Biochemical Indexes of Swimming Rats[J].Food Research and Development,2021,42(10):87-92.

加工编辑:王艳

收稿日期:2021-01-20