骨质疏松症(osteoporosis,OP)是一种全身性骨骼疾病,主要特征为低骨量和骨组织的微细结构退变,易导致骨脆性增加和骨折的发生。妇女绝经后因卵巢功能衰退,血液及组织内的雌激素水平大幅降低,破骨细胞活跃程度增强,骨转化率加快,骨吸收大于骨形成,引发绝经后骨质疏松症(postmenopausal osteoporosis,PMOP)。统计数据显示,PMOP发病率高达60%~70%,严重威胁患者的健康和生活质量[1-3]。
维生素D2(VD2)作为维生素D家族的重要一员,与维生素D3(VD3)具有相近的生物功能,均能调节钙磷的代谢,促进骨骼的健康,在临床上用于预防和治疗佝偻病、骨质软化、骨质疏松等疾病[4-6]。人体自身不能合成VD2,需通过食物补充。高营养价值的食用菌中不含VD2或含量极低,但却含有较高的VD2前体——麦角甾醇[7-8]。在紫外照射下,食用菌中麦角甾醇发生B环开环生成VD2前体,再经1,7-氢迁移和重排周环反应生成VD2。食用菌通过紫外辐照处理,其VD2含量大幅度提高[10-18],可作为补充VD的食品及药品的重要天然原料。关于高含量VD2食用菌的体内生物利用率,文献多对正常大鼠或缺乏VD人群补充不同剂量的紫外照射食用菌,从血清Ca2+浓度、25-羟基-VD2含量、甲状旁腺激素表达水平、股骨密度、胫骨厚度、Ca2+转运基因在十二指肠和肾脏中的表达等指标进行研究,结果表明通过紫外照射提高VD2含量的食用菌具有较好的生物利用度[19-24],但有关其对骨质疏松症的预防和治疗效果尚未见研究报道。
为了进一步明确高含量VD2食用菌对骨质疏松症的预防和治疗效果,本文以去双侧卵巢骨质疏松大鼠为模型,以所研制的金针菇源VD2复合片剂为材料,比较大鼠血清钙、磷、碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,AKP)、抗酒石酸酸性磷酸酶(tartrate resistant acid phosphatase,StrACP)等生化指标及脏器指数、子宫和骨组织等形态病理学指标变化,旨在为食用菌源VD2产品的研发及高值化应用,以及绝经后骨质疏松症的预防和治疗提供理论依据和重要参考。
Nikon Ti倒置荧光显微镜:尼康光学仪器有限公司;BIOTEK EPOCH酶标仪:美国博腾仪器有限公司;1200紫外分光光度计:岛津仪器有限公司;RM2235石蜡组织切片机:莱卡显微系统有限公司;YT-7C摊烤片机:孝感市亚光医用电子技术公司;5424型低速离心机:德国Eppendorf有限公司;ZNCL-BS磁力搅拌器:常州梅香仪器有限公司;BSA224S-CW电子天平:赛多利斯仪器有限公司;DHP-200电热恒温培养箱:河北大宏实验仪器有限公司。
VD2滴丸:国药控股星鲨制药有限公司;金针菇源VD2复合片剂:陕西理工大学维生素D生理与应用研究所自制;微板法钙试剂盒、磷钼酸法磷测试盒、碱性磷酸酶试剂盒、抗酒石酸酸性磷酸酶试剂盒:南京建成生物工程研究所。
健康雌性3月龄未孕SD大鼠24只,由西安交通大学实验动物中心提供,体重210 g~258 g,分笼饲养,自由饮水,适应性饲养1周后进行实验。
将24只SD大鼠分为假手术组(Sham组)和去卵巢组(OVX组),其中Sham组6只,OVX组18只。OVX组大鼠参考文献方法实施卵巢去除手术[25-26]。Sham组大鼠实施假手术,术后1周对OVX组大鼠进行阴道涂片,连续5 d,观察去卵巢组不出现动情周期,表明卵巢去除成功。
手术后1周,对OVX组进行分组,分别是OVX+市售 VD2组(OVX+VD2组)、OVX+金针菇源 VD2复合片剂组(OVX+MVHP组)和OVX组,每组6只。其中Sham组每只大鼠每次灌胃1 mL纯花生油;OVX组每只大鼠每次灌胃1 mL纯花生油;OVX+VD2组每只大鼠每次灌胃含市售VD2滴剂的花生油(15 IU/mL)1 mL;OVX+MVHP组每只大鼠每次灌胃含金针菇源VD2复合片剂的花生油(15 IU/mL)1 mL。隔天灌胃,持续给药16周。
连续给药16周后将大鼠处死并称重,打开大鼠腹腔,取出大鼠心脏、肝、脾、肾和子宫等脏器分别进行称重,计算各脏器指数。脏器指数=脏器湿重/大鼠体重。
连续给药16周后采集大鼠眼眶静脉血,4000r/min离心10 min,分离血清,-20℃冰箱保存备用。血清钙含量、血清磷含量、血清碱性磷酸酶活性、抗酒石酸酸性磷酸酶活性测定参考试剂盒方法进行。
连续给药16周后处死动物,取其左侧胫骨和股骨,3.7%多聚甲醛4℃固定24 h,磷酸盐缓冲液漂洗,10%乙二胺四乙酸(pH 8.0)4℃,脱钙21 d。将脱钙标本以磷酸盐缓冲液充分漂洗,依次脱水、透明、浸蜡、包埋、石蜡切片(5 μm),苏木精-伊红染色(hematoxylin-eosin staining,HE)。显微镜观察各组大鼠骨组织形态[26]。
取各组大鼠右侧子宫角组织,依次脱水、透明、浸蜡、包埋、石蜡切片(5 μm),HE 染色。光学显微镜 4×10倍镜下观察子宫管径厚度,10×10倍镜下观察子宫固有层腺体数量,40×10倍镜下观察子宫黏膜上皮厚度,并分别随机选择5个视野拍照保存,应用Image Pro Plus软件对子宫管径厚度、子宫黏膜上皮厚度进行形态计量学测定[26]。
试验结果均以“平均数±标准差”表示,试验数据采用SPSS 22.0软件进行统计分析,采用Tukey’s HSD进行方差分析(p<0.05)。
各实验组大鼠血清钙和磷含量测定结果见图1。
图1 不同处理组大鼠血清钙和磷浓度(n=6)
Fig.1 Serum calcium and phosphorus concentrations in rats in different treatment groups(n=6)
不同小写字母表示差异显著(p<0.05)。
图1结果表明,与OVX组相比,OVX+MVHP组血清钙浓度显著升高(p<0.05)。Sham 组、OVX+VD2组血清钙浓度与OVX组、OVX+MVHP组均无显著差异(p>0.05);与OVX组相比,Sham组、OVX+MVHP组血清磷浓度均无显著差异(p>0.05),而OVX+VD2组血清磷浓度显著下降(p<0.05)。
各实验组血清AKP与StrACP活性测定结果见表1。
表1 各组大鼠血清中AKP、StrACP测量结果(n=6)
Table 1 The AKP and StrACP in rats seurm of different groups(n=6)
注:同列数据不同小写字母表示差异显著(p<0.05)。
组别AKP/(U/L)StrACP/(U/L)Sham组 35.41±2.21c 35.47±2.65a OVX组 60.90±2.64a 30.80±2.56ab OVX+VD2组 38.06±0.86c 26.80±5.77b OVX+MVHP组 44.77±1.29b 28.24±2.48b
表1结果表明,Sham组、OVX+VD2组和OVX+MVHP组血清中AKP活性与OVX组相比均显著降低(p<0.05),但各组血清StrACP活性与OVX组相比均无显著差异(p>0.05)。OVX+VD2组和OVX+MVHP组血清StrACP活性与Sham组相比均显著降低(p<0.05),但二者之间无显著差异(p>0.05)。
各组大鼠主要脏器指数测定结果如表2所示。
表2 各组大鼠脏器指数结果比较(n=6)
Table 2 The major organ index of rats in different groups after operation(n=6)
注:同列数据不同小写字母表示差异显著(p<0.05)。
组别 心脏指数 肝脏指数 脾脏指数 肾脏指数 子宫指数Sham组 0.004 1±0.000 1b 0.036 2±0.000 9b 0.002 4±0.000 2b 0.008 6±0.000 2ab 0.005 1±0.001 7a OVX组 0.005 4±0.000 2a 0.032 7±0.002 0c 0.002 1±0.000 1c 0.007 9±0.000 2c 0.001 5±0.000 1c OVX+VD2 0.004 2±0.000 1b 0.041 4±0.001 5a 0.002 9±0.000 1a 0.008 1±0.000 3bc 0.005 0±0.000 2a OVX+MVHP 0.004 2±0.000 2b 0.035 5±0.000 9b 0.002 3±0.000 0bc 0.008 6±0.000 3a 0.003 5±0.000 1b
与OVX组相比,OVX+MVHP组肝脏指数、肾脏指数、子宫指数显著升高(p<0.05),心脏指数显著降低(p<0.05),而脾脏指数无显著差异(p>0.05)。与OVX+VD2组相比,OVX+MVHP组肝脏指数、脾脏指数、子宫指数显著降低(p<0.05),肾脏指数显著升高(p<0.05),而心脏指数无显著差异(p>0.05)。
子宫组织病理形态学观察结果见图2。
如图2所示,Sham组大鼠子宫断面结构在光镜下主要呈现壁厚腔窄的形态,单层柱状上皮规则排列,子宫肌层较厚,各层肌纤维相互交织,固有层分布有腺体和血管。与Sham组相比,OVX组子宫管径厚度明显变薄,子宫腔径厚度也明显增加,子宫黏膜上皮厚度明显变小,固有层子宫腺体减少;与OVX组相比,OVX+VD2组和OVX+MVHP组子宫管径厚度和子宫黏膜上皮厚度明显增加,子宫腔径厚度明显减小,肌层和子宫内膜显著增厚,固有层子宫腺体增多。
图2 子宫组织病理形态学观察
Fig.2 Histopathological observation of uterus of rats in different groups
A.Sham组子宫HE 4倍;B.OVX组子宫HE 4倍;C.OVX+VD2组子宫HE 4倍;D.OVX+MVHP组子宫HE 4倍;E.Sham组子宫HE 10倍;F.OVX组子宫HE 10倍;G.OVX+VD2组子宫HE 10倍;H.OVX+MVHP组子宫HE 10倍。
子宫组织形态计量学结果如表3所示。
表3 各组大鼠子宫形态计量学指标测量结果比较(n=6)
Table 3 The measurements of uterine morphometric indicators in rats of different groups(n=6)
注:同列数据不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。
组别 子宫管径厚度/μm子宫腔径厚度/μm子宫黏膜上皮厚度/μm Sham组 1 366.96±105.89a 248.93±99.06b 21.36±2.71a OVX组 503.03±100.65c 806.33±67.39a 13.42±0.71c OVX+VD2 909.81±59.29b 178.76±12.49b 18.99±0.91ab OVX+MVHP 1 069.05±160.38b 184.68±21.44b 17.43±1.69b
与Sham组相比,OVX组子宫管径厚度和子宫黏膜上皮厚度显著降低(p<0.05),子宫腔径厚度显著升高(p<0.05);与OVX组相比,OVX+MVHP组子宫管径厚度和子宫黏膜上皮厚度显著升高(p<0.05),而子宫腔径厚度显著降低(p<0.05);OVX+MVHP组与OVX+VD2组子宫管径厚度、子宫黏膜上皮厚度及子宫腔径厚度均无显著差异(p>0.05)。
骨组织病理形态学观察结果如图3所示。
图3 各组大鼠胫骨和股骨病理学观察
Fig.3 Pathological observation of femora and tibia of rats in different groups
A.Sham组胫骨HE 10倍;B.OVX组胫骨HE 10倍;C.OVX+VD2组胫骨HE 10倍;D.OVX+MVHP组胫骨HE 10倍;E.Sham组股骨HE 10倍;F.OVX组股骨HE 10倍;G.OVX+VD2组股骨HE 10倍;H.OVX+MVHP组股骨HE 10倍。
Sham组股骨的骨小梁致密且较宽、排列整齐并连接成网;与Sham组相比,OVX组股骨的骨小梁出现断裂,结构扭曲不完整,大部分不能连接成网状;与OVX组相比,OVX+MVHP组骨小梁有所恢复,骨小梁间隙变小,排列尚整齐并相互连接。Sham组胫骨骨髓腔较小,骨小梁致密且相互连接;与Sham组相比,OVX组胫骨骨髓腔变大,骨小梁松散;与OVX组相比,OVX+MVHP组骨髓腔变小,骨小梁断裂情况改善。
切除雌性大鼠双侧卵巢所致的骨质疏松,能够正确模拟女性由于雌激素缺乏而引起骨质疏松的临床特征,是学术界目前公认的研究绝经后骨质疏松症的动物模型,亦是绝经后骨质疏松症研究的“金标准”。本文以去双侧卵巢骨质疏松大鼠为模型,以所研制的金针菇源VD2复合片剂为材料,比较了不同处理组大鼠血清钙、磷、AKP、StrACP等生化指标及脏器指数、子宫和骨组织形态病理学等指标变化,结果表明,与Sham组比较,OVX组大鼠子宫系数、组织病理学、形态计量学及骨组织病理学均有显著差异,说明去卵巢大鼠骨质疏松模型建立成功。与OVX组相比,OVX+MVHP组血清钙浓度显著升高(p<0.05),AKP浓度显著降低(p<0.05),而血清磷和StrACP浓度无显著差异(p>0.05),心、肝、肾、子宫等脏器指数差异显著(p<0.05),而脾脏无显著差异(p>0.05);子宫管径厚度和子宫黏膜上皮厚度显著升高(p<0.05),子宫腔径厚度显著降低(p<0.05),股骨和胫骨骨小梁致密,小梁间距和骨髓腔变小。初步表明金针菇源VD2复合片剂对绝经后骨质疏松症具有一定的预防和治疗作用,研究结果为紫外照射提高VD2含量的食用菌的生物利用度,以及绝经后骨质疏松症的预防和治疗提供理论依据和重要参考。
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